Análise de Alimentos - Processamento de Amostras e Análise de Dados PDF
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Universidade de Aveiro
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Summary
This document provides information about food analysis, specifically the process of analyzing food samples for the presence of microorganisms. It describes methods to analyze both fresh and processed food products to determine food safety. The document mentions specific analyses and procedures, like identifying pathogens such as Staphylococcus aureus and Salmonella. The content is relevant to a food science or microbiology course.
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Análise de alimentos Análise de alimentos frescos Análise de alimentos processados Quantificação de indicadores Deteção de microrganismos patogénicos Universidade de Aveiro Análise de alimentos processados Alimento a analisar: pastel d...
Análise de alimentos Análise de alimentos frescos Análise de alimentos processados Quantificação de indicadores Deteção de microrganismos patogénicos Universidade de Aveiro Análise de alimentos processados Alimento a analisar: pastel de nata Microrganismos a pesquisar: Microrganismos totais a 30 °C e.g. bola de berlin Coliformes totais Escherichia coli Bolores e leveduras Staphylococcus aureus Microrganismos Salmonella patogénicos Análise de alimentos frescos Alimento a analisar: alface lavada e não lavada Microrganismos a pesquisar: Microrganismos totais a 30 °C e.g. alface Enterobacteriaceae Escherichia coli Indicadores Diluições: 10-1 – 10-3, 2 réplicas Microrganismos totais a 30 °C Meio PCA (30 °C/72 h) Sementeira por: Enterobacteriaceae incorporação superfície Meio VRBD (37 °C/24 h) + meio de glucose (37 °C/24 h) Coliformes totais Contar colónias Meio VRBL (37 °C/24 h) Escherichia coli E. coli – azul turquesa Meio TBX (44 °C/24 h) Enterobacteriaceae – vermelhas com precipitado Bolores e leveduras Restantes – contar todas Meio CRBA (25 °C/72 h) as colónias Pesquisa de microrganismos patogénicos Microrganismos patogénicos Segundo a legislação muitas vezes é necessário pesquisar os próprios microrganismos patogénicos As técnicas de deteção são complexas e demoradas Pré-enriquecimento (para alguns microrganismos) Seletivo ou não seletivo Enriquecimento (para alguns microrganismos) Seletivo ou não seletivo Isolamento (ou quantificação) Meios diferenciais e seletivos Confirmação Testes bioquímicos ou serológicos Pesquisa de microrganismos patogénicos Pesquisa de Staphylococcus aureus Bactéria Gram positiva com baixo conteúdo em GC É habitualmente transmitida pelos manipuladores de produtos alimentares que apresentam infeções nasais ou feridas cutâneas Produz 1 exotoxina e 6 tipos de enterotoxinas responsáveis por muitas intoxicações alimentares Há estirpes multiresistentes isoladas em alimentos Pesquisa de microrganismos patogénicos Staphylococcus aureus Pesquisa de Amostra Staphylococcus 10-1 Semear 10010µL -1 10 -2 aureus (0,1 ml) (0,5 10 – 10 ml) -1 -3 (0,1 ml) (à sperfície) 2 réplicas em BPA (37°C, 48 h) Pesquisa de microrganismos patogénicos Staphylococcus aureus Teste Meio Resultado Isolamento BPA (Baird Parker - Colónias pretas, brilhantes Agar) convexas - Diâmetro 1-5 mm com margem branca estreita rodeada por uma zona clara larga (2-5 mm) Confirmação BHI (Brain Heart - Turvação Infusion) - Formação de um coágulo no Ou Teste da coagulase fundo do tubo (facilmente observável a 90°C) Halo transparente à volta das colónias no BPA com “rabbit plasma fibrinogen” (RPF) Pesquisa de microrganismos patogénicos Objectivo: Usado para distinguir estirpes de Staphylococcus aureus de outras estirpes de patogénicas de Staphylococcus Procedimento: Adicionar a cultura a testar a um tubo de plasma e incubar a 37 °C durante 1 - 4 horas Interpretação: Formação de um coágulo no fundo do tubo (facilmente observado quando o tubo é aquecido a 90 °C) Considerar resultado negativo quando não se forma coágulo após 24 horas Pesquisa de microrganismos patogénicos Pesquisa de Salmonella Pertence à família das Enterobacteriaceae (de Gram negativo) Apresenta infeciosidade variável de espécie para espécie Os alimentos mais susceptíveis de serem contaminados são: a água, alimentos crús (carne, ovos e marisco), alimentos insuficientemente tratados por calor e alimentos recontaminados Pesquisa de microrganismos patogénicos Salmonella Amostra Pesquisa de (25 g) Enriquecimento Salmonella BPW não seletivo (37 °C, 24 h) Meio Selenito-cistina Meio Rappaport (37 °C, 24+24 h) (42 °C, 24+24 h) Enriquecimento Isolamento XLD seletivo BGA (37 °C, 24 h) TSI Ureia Api 20E (37 °C, 24 h) Confirmação Pesquisa de microrganismos patogénicos Salmonella Teste Meio Resultado Pré- BPW (Buffered Turvação enriquecimento Peptoned Water) Enriquecimento Selenito Turvação Rappaport Turvação Isolamento XLD (Xilose Colónias com cor semelhante ao meio Lysine de cultura, translúcidas, por vezes Deoxycolate) com centro preto (=Shigella, Providencia e Pseudomonas) BGA (Bile Colónias vermelhas/rosadas rodeadas Green Agar) por uma zona vermelha brilhante ou colónias laranja opacas Confirmação TSI (Triple Alteração de cor , formação de Sugar Iron) bolhas ou buracos Ureia Alteração de cor Api 20E Alteração de cor Pesquisa de microrganismos patogénicos Meio TSI Preparado em tubos inclinados Contém glucose, lactose, sacarose, tiossulfato, ferro e vermelho de fenol como indicador (amarelo pH < 6.8 e vermelho pH >6.8) Diferencia bactérias de Gram – com base em: Metabolização de glucose, lactose e/ou sacarose Produção de ácido durante a fermentação Produção de gás durante a fermentação Redução de enxofre com produção de H2S Pesquisa de microrganismos patogénicos Bactérias fermentativas: Meio TSI Fermentação da glucose - cor amarela só no fundo devido a produção de pouco ácido Fermentação da glucose e lactose - cor amarela no fundo e na parte inclinada devido a produção de muito ácido Produção de gás durante a fermentação – formação de bolhas ou buracos no fundo do tubo Bactérias não fermentativas: Fundo e parte inclinada com cor vermelha O meio contem sulfato de ferro Produção de H2S – o H2S reage com o ferro e forma sulfito ferroso que forma um precipitado preto no fundo do tubo Pesquisa de microrganismos patogénicos SCORING THE SLANTS: Examine the slant and butt, and record data using the following criteria: SLANT Code Interpretation Example COLOR: letter: does not ferment either Example red RED R lactose or sucrose slant ferments lactose and/or Example yellow YELLOW Y sucrose slant Pesquisa de microrganismos patogénicos SCORING THE BUTT COLOR AND CONDITION: BUTT COLOR/CONDI Code Interpretation Example TION no fermentation, the bacterium is an Example red RED R obligate aerobe butt some fermentation has occurred, Example YELLOW Y acid has been produced, it is a yellow butt facultative anaerobe. Seen as cracks in the agar, bubbles, or the entire slant may be pushed Example GAS FORMED YG out of the tube. (Caution: these yellow butt gassy fermenters may have bacteria with gas close to the opening.) Example black BLACK "+" H2S has been produced butt Pesquisa de microrganismos patogénicos BACTERIA: BACTERIUM SLANT BUTT H2S COMMENTS Shigella dysenteriae R Y Causes food infection dysentery Salmonella R YG + Causes food poisoning Typhimurium Salmonella Typhi R Y + Causes typhoid fever Aerobacter Similar to Klebsiella, but Y YG aerogenes nonrespiratory Escherichia coli Y YG Most common of GI flora one of "paracolon" group Citrobacter freundii Y YG + (nonpathogenic) Causes GU infections, highly Proteus vulgaris Y YG + motile Klebsiella R or Pneumonia in debilitated patients Y pneumoniae YG (nosocomial) Pseudomonas GI inhabitant, causes wound, GU R R aeruginosa infections GI inhabitant, opportunistic Alcaligenes faecalis R R pathogen of GU Pesquisa de microrganismos patogénicos Teste da urease Enzima urease: hidrolisa a ureia em amónia e dióxido de carbono. Positivo: alteração de cor (rosa/vermelho) devido à libertação de amónia com produção de carbonato de amónia (aumento do pH para 8,4) Negativo: não ocorre alteração de cor, pH 6,8. Klebsi ella 80 + – + – + – + – – + – + + + + + + + + + pneu API 20E 30 monia e Prote 80 us – – – – –++++– ++– – – – +– + – 68 vulgar is Salmo 8P – – + + – + – – – – – + + – + + – + – + nella 14 sp. API 20E VRBD TBX 1º dia Escherichia coli A... Enterobacteriaceae A... 2x`s L Indicadores e S. aureus Ou Stomacher Preparação da solução mãe Salmonella Pesar 25 g em assépcia e juntar 225 mL de água 25 g peptonada Homogeneizar com varinha ou no stomacher Incubar 24 h a 37 °C Semear Após homogeneização: L e VRBD TBX B L e VRBD TBX TBX TBX Aspeto das colónias nos meios de cultura Microrganismos totais Coliformes Enterobactereaceae Escherichia coli Staphylococcus aureus Bolores e leveduras MA1 Pesquisa de microrganismos patogénicos Salmonella em Selenito Salmonella em Rappaport Salmonella em BGA Slide 29 MA1 Maria Almeida; 06/04/2020 Análise de dados Exemplo resultados de Escherichia coli Contagem 54 e 56 (média 55) colónias nas placas de 10-1 (na solução mãe) 55 colónias contadas em 1 mL de amostra 10-1 Quantas colónias por grama de alimento? 1 mL ----- g ? 55 colónias ----- 0,1 g 10 g ----- 100 mL x ----- 1 g x ------- 1 mL x = 550 ufc g-1 x = 0,1 g Se contagem fosse na diluição 10-2 x = 550 x 10 = 5500 ufc g-1 x = 5,5 x 103 ufc g-1 Valores Guia para avaliação da qualidade microbiológica de alimentos prontos a comer preparados em estabelecimentos de restauração Resultados análises ACRA Microrganismos Bolores Leveduras Coliformes S. aureus E. coli Amostra (nº) Alimento Totais (10^-2) (10^-1) (10^-1) (10^-1) (10^-1) (10^-1) 25 0 0 5 14 0 1 Rolo de carne 31 0 0 6 9 0 5 0 0 0 0 0 2 Perca assada 3 0 0 0 0 0 1472 0 2 0 0 0 3 Frango gratinado 1856 0 4 0 0 0 Bacalhau com 1984 0 0 0 0 0 4 legumes 2336 0 1 0 0 0 488 0 0 0 2 0 5 Lasanha 408 0 0 0 4 0 >10^6 1 30 9 164 10 6 Maionese de peixe >10^6 2 17 10 224 9 1840 2 896 0 0 2 7 Bacalhau de natas 2048 0 640 0 0 5 Picadinho de porco 816 0 0 0 1 0 8 com ameixa 656 0 0 0 1 0 Esparguete à 992 0 2 0 4 0 9 bolonhesa 1120 0 2 0 0 0 Pescada dourada 1008 0 0 1 0 0 10 c/ molho verde 896 0 0 17 0 0 Volume Semeado 1 mL 0.1 mL 0.1 mL 1 mL 1 mL 1 mL 10^-2 Resultados Amostras ACRA 23-03-11 Tabela 1 - Teor de microrganismos obtidos nas amostras de 23 de Março de 2011 e respectiva classificação dos niveis de qualidade microbiológica. Microrg Levedur Colifor S. Amostra Classificaçã Bolores NQ E. coli Alimento Totais NQM NQM as NQM mes NQM aureus NQM (nº) o por grupo (UFC/g) M (UFC/g) (UFC/g) (UFC/g) (UFC/g) (UFC/g) Rolo de 1 Grupo 1 2800 Ac 0 Sat 0 Sat 55 Ac 0 Sat 1150 Sat carne 2 Perca assada Grupo 1 400 Ac 0 Sat 0 Sat 0 Sat 0 Sat 0 Sat Frango 3 Grupo 1 166400 NSat 0 Sat 300 Ac 0 Sat 0 Sat 0 Sat gratinado Bacalhau 4 Grupo 1 216000 NSat 0 Sat 50 Sat 0 Sat 0 Sat 0 Sat com legumes 5 Lasanha Grupo 1 44800 NSat 0 Sat 0 Sat 0 Sat 0 Sat 300 NSat Maionese de 6 Grupo 1 100000000 NSat 150 NSat 2350 Ac 95 Ac 95 NSat 194000 In peixe Bacalhau de 7 Grupo 1 194400 NSat 100 Ac 76800 NSat 0 Sat 35 NSat 0 Sat natas Picadinho de 8 porco com Grupo 1 73600 NSat 0 Sat 0 Sat 0 Sat 0 Sat 100 NSat ameixa Esparguete à 9 Grupo 1 105600 NSat 0 Sat 200 Ac 0 Sat 0 Sat 200 NSat bolonhesa Pescada 10 dourada c/ Grupo 1 95200 NSat 0 Sat 0 Sat 90 Ac 0 Sat 0 Sat molho verde