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Questions and Answers
Les parasites sanguicoles peuvent être trouvés à l'intérieur et à l'extérieur des cellules.
Les parasites sanguicoles peuvent être trouvés à l'intérieur et à l'extérieur des cellules.
True (A)
Le moment optimal pour prélever du sang pour la recherche de parasites dépend de l'espèce de parasite recherchée.
Le moment optimal pour prélever du sang pour la recherche de parasites dépend de l'espèce de parasite recherchée.
True (A)
Le prélèvement sanguin pour la recherche parasitaire doit toujours être effectué avant un traitement spécifique.
Le prélèvement sanguin pour la recherche parasitaire doit toujours être effectué avant un traitement spécifique.
True (A)
Pour la recherche de Plasmodium, le prélèvement sanguin est idéalement effectué pendant les pics fébriles.
Pour la recherche de Plasmodium, le prélèvement sanguin est idéalement effectué pendant les pics fébriles.
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Les microfilaires de Loa loa sont généralement plus actives la nuit.
Les microfilaires de Loa loa sont généralement plus actives la nuit.
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L'examen direct d'une goutte fraîche est une méthode de diagnostic directe.
L'examen direct d'une goutte fraîche est une méthode de diagnostic directe.
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L'examen sérologique à la recherche d'anticorps ou d'antigènes circulants est une méthode de diagnostic indirecte.
L'examen sérologique à la recherche d'anticorps ou d'antigènes circulants est une méthode de diagnostic indirecte.
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L'examen parasitologique du sang peut identifier les parasites qui se multiplient uniquement dans les organes hématopoïétiques.
L'examen parasitologique du sang peut identifier les parasites qui se multiplient uniquement dans les organes hématopoïétiques.
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La méthode de la goutte épaisse permet d’observer les parasites après seulement 5 minutes.
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La coloration de Giemsa est utilisée pour observer les parasites au microscope.
La coloration de Giemsa est utilisée pour observer les parasites au microscope.
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Lors de la réalisation d’un frottis sanguin, il est nécessaire d’étaler le sang de manière à obtenir un cercle de $10$ centimètres de diamètre.
Lors de la réalisation d’un frottis sanguin, il est nécessaire d’étaler le sang de manière à obtenir un cercle de $10$ centimètres de diamètre.
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Pour examiner un frottis sanguin coloré au Giemsa, il est conseillé d’utiliser un grossissement $x 4$ au microscope.
Pour examiner un frottis sanguin coloré au Giemsa, il est conseillé d’utiliser un grossissement $x 4$ au microscope.
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La figure 3 présente un Schizonte en bande équatoriale de Plasmodium malariae.
La figure 3 présente un Schizonte en bande équatoriale de Plasmodium malariae.
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Après coloration, les lames doivent être rincées à l’eau claire en faisant couler le jet directement sur le sang coloré.
Après coloration, les lames doivent être rincées à l’eau claire en faisant couler le jet directement sur le sang coloré.
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Pour réaliser un frottis sanguin, on utilise un mouvement tournant pour défibriner le sang, afin d’éviter la formation de caillots qui pourraient gêner l’observation des parasites.
Pour réaliser un frottis sanguin, on utilise un mouvement tournant pour défibriner le sang, afin d’éviter la formation de caillots qui pourraient gêner l’observation des parasites.
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La figure 4 présente un Trypanosoma cruzi.
La figure 4 présente un Trypanosoma cruzi.
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L'examen direct n'est pas toujours efficace mais peut donner une réponse immédiate en cas d'infestation massive.
L'examen direct n'est pas toujours efficace mais peut donner une réponse immédiate en cas d'infestation massive.
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Les trypanosomes sont difficiles à repérer dans une goutte de sang.
Les trypanosomes sont difficiles à repérer dans une goutte de sang.
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Pour réaliser un frottis sanguin, il faut que l'étalement soit épais et irrégulier.
Pour réaliser un frottis sanguin, il faut que l'étalement soit épais et irrégulier.
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La coloration au May-Grünwald nécessite une action de 3 minutes pour la fixation.
La coloration au May-Grünwald nécessite une action de 3 minutes pour la fixation.
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La dilution du Giemsa est préparée avant de procéder à la coloration au May-Grünwald.
La dilution du Giemsa est préparée avant de procéder à la coloration au May-Grünwald.
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La lame doit sécher à l'air en position horizontale après la coloration.
La lame doit sécher à l'air en position horizontale après la coloration.
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Le frottis sanguin doit avoir des bords irréguliers et présenter des stries.
Le frottis sanguin doit avoir des bords irréguliers et présenter des stries.
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Il est nécessaire d'essuyer la face inférieure de la lame avec du papier filtre avant le séchage.
Il est nécessaire d'essuyer la face inférieure de la lame avec du papier filtre avant le séchage.
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Study Notes
Parasitologie - TP n°02 : Diagnostic Hématologique
-
Objectifs:
- Généralités sur les parasites sanguicoles
- Technique de prélèvement de sang
- Diagnostic des parasites dans le sang
- Examen direct d'une goutte fraîche
- Examen sur frottis secs colorés
- Examen d'une goutte épaisse
- Observation
Types de Parasites
- Intracellulaires: Plasmodium, Babésies, Toxoplasmes, Leishmanies (formes viscérales)
- Extracellulaires: Formes mobiles extracellulaires (Trypanosomes, Microfilaires)
Prélèvement
- Le moment idéal de prélèvement varie selon l'espèce parasitaire
- Généralement, le prélèvement se fait avant un traitement spécifique
- Pour la recherche de Plasmodium, le prélèvement se fait au moment des pics fébriles
- Pour les microfilaires, la périodicité (diurne ou nocturne) est importante (Loa loa, Wuchereria bancrofti)
- Le prélèvement peut se faire par piqûre au doigt ou ponction veineuse avec anticoagulant (Citrate de Sodium ou EDTA)
Diagnostic des Parasites dans le Sang
- Examen de certitude pour la recherche des parasites sanguicoles
- Recherche des parasites se multipliant ou séjournant dans le sang ou les organes hématopoïétiques
- Sert à identifier la présence des parasites : Plasmodium, Leishmania, Trypanosoma, Microfilaires, Toxoplasma
Examens Directs
-
Examen direct d'une goutte fraîche:
- Déposer une goutte de sang sur une lame propre
- Déposer une lamelle
- Observer au microscope objectif 40x
- C'est un examen efficace, mais pas toujours, en cas d'infestation massive
- Idéal pour les trypanosomes et microfilaires grâce à leur mobilité
-
Examen sur frottis secs colorés:
- Déposer une petite goutte de sang sur une lame
- Étaler le sang finement sur la lame avec une lame rodée à 45°
- Sécher rapidement la lame
- Coloration au May-Grünwald-Giemsa (fixation, coloration, rinçage, séchage)
- Préparation de la solution Giemsa
- Coloration de la préparation (35 minutes)
- Observation au microscope avec grossissement x100
Examen d'une goutte épaisse
- Prélève une grosse goutte de sang par ponction des capillaires cutanés
- Dépose la goutte sur une lame en réalisant des mouvements circulaires
- Laisse sécher 12 heures à l'abri de la poussière
- Ajoute une goutte d'eau distillée, laisse agir 20 minutes (hémolyse)
- Sèche la préparation
- Coloration au May-Grünwald-Giemsa
- Observation au microscope
- Méthode pour une certaine concentration des parasites : résultat visible après 24 heures
Qualité du Frottis
- Le frottis doit être régulier sans coupures, bords parallèles à la lame, mais distants
- L'extrémité doit être arrondie ou en pinceau
- Ne pas avoir de trous ni de stries
- Ne pas être trop épais, ni trop mince, ni trop long
Observation microscopique
- Les différents éléments du sang (hématies, lymphocytes, monocytes, plaquettes, neutrophiles, éosinophiles, basophiles) peuvent être observés sur le frottis.
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Description
Ce quiz couvre les techniques de diagnostic hématologique des parasites sanguicoles. Vous découvrirez les méthodes de prélèvement de sang et l'observation des parasites à travers divers examens. Testez vos connaissances sur les parasites intracellulaires et extracellulaires ainsi que les moments idéaux pour le prélèvement.
