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Questions and Answers
Wie werden Proteine bei der Gelfiltrationschromatographie aufgetrennt?
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Was passiert mit kleinen Molekülen während der Gelfiltrationschromatographie?
Was passiert mit kleinen Molekülen während der Gelfiltrationschromatographie?
Wie beeinflusst die Länge der Säule die Trennung der Proteine?
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Welche Moleküle verlassen die Gelfiltrationssäule zuerst?
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Welche Rolle spielen die porösen Partikel in der Gelfiltrationschromatographie?
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Welche Faktoren beeinflussen die Diffusionsrate durch die Membran?
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Welches Element ist kein Teil der chromatographischen Trennmethode?
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Was beschreibt die isokratische Trennung in der Chromatographie?
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In der Säulenchromatographie ergeben sich Unterschiede in der Wanderung der Proteine aufgrund von:
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Welche der folgenden Aussagen zur mobilen Phase ist falsch?
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Was passiert mit dem Eluat in der Säulenchromatographie?
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Welche der folgenden Eigenschaften ist kein Kriterium für die Trennung in der Chromatographie?
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Was beschreibt die Gradiententrennung in der Chromatographie am besten?
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Welche der folgenden Methoden wird zur Entsalzung einer Proteinlösung verwendet?
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Wie wird die Leitfähigkeit zur Bestimmung der Salzkonzentration in einer Probe genutzt?
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Was ist das Molekulargewicht von Ammoniumsulfat?
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Welche Größe hat die Dialysemembran im Vergleich zur Gelchromatographie?
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Wie erfolgt die Bestimmung der Proteinkonzentration nach der Dialyse?
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Wie wird die Entsalzung der Proteinlösung während der Dialyse durchgeführt?
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Was passiert mit der entsalzten Probe nach der Dialyse?
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Was ist das Ziel der Bradford-Färbereaktion in diesem Kontext?
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Was ist der Hauptgrund für das Entsalzen von Proteinlösungen im Reinigungsschritt?
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Welche Methode wird verwendet, um Proteine aufgrund ihrer Größe zu trennen?
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Welches dieser Eigenschaften ist nicht Teil der Proteinreinigung?
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Was ist das Ziel der Dialyse in der Proteinaufreinigung?
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Welche der folgenden Aussagen über Ionenaustauschchromatographie ist falsch?
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Wie viele grundlegende Schritte umfasst der Prozess zur Isolation von Proteinen laut dem gegebenen Inhalt?
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Was erfordert die Charakterisierung eines Proteins?
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Welche der folgenden Methoden wird nicht zur Trennung von Proteinen nach ihrer spezifischen Bindungsaktivität genutzt?
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Was beschreibt das Größenausschlussprinzip in Bezug auf semipermeable Membranen?
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Wie wird der Molekulargewichtsgrenzwert (MWCO) definiert?
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Welches Gesetz beschreibt den Diffusionsfluss der gelösten Teilchen?
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Welche der folgenden Aussagen über Osmose ist korrekt?
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Was passiert während des Dialyseprozesses?
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Was ist eine wichtige Eigenschaft von semipermeablen Membranen?
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Was ist der Effekt eines höheren Reibungskoeffizienten (f) auf den Diffusionsprozess?
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Welche Rolle spielt die Viskosität (η) im Diffusionsprozess?
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Was beschreibt das Ausschlussvolumen (V0) in der Größenausschlusschromatographie?
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Wie beeinflusst der Partikeldurchmesser die Auflösung in der Chromatographie?
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Welche Rolle spielen große Moleküle in der Gelfiltrationschromatographie?
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Was ist ein optimales Ergebnis einer effektiven Größenausschlusschromatographie?
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Welches Material ist kein Trägermaterial in der Chromatographie?
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Was passiert mit kleinen Molekülen in den Kügelchen während der Chromatographie?
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Welche der folgenden Aussagen trifft auf das Innere der Kügelchen zu?
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Was stellt das Gesamtvolumen (Vt) in der Chromatographie dar?
Was stellt das Gesamtvolumen (Vt) in der Chromatographie dar?
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Study Notes
Biochemie Praktikum - Wintersemester 2023/2024
- Kurs: 485.049 Biochemie Lab Course / 630.110 / 665.055 Molekulare Biologie und Biochemie
- Semester: Wintersemester 2023/2024
- Dozentin: Dr. Martina Sonego
- E-Mail: [email protected]
Praktikumsaufbau
-
Tag 1:
- Konzentrieren
- Denaturierende und native Fällung
- Protein Konzentrationsbestimmung
-
Tag 2:
- Entsalzen
- Gelchromatographie
- Dialyse
-
Tag 3:
- Elektrophorese
- SDS-PAGE
Warum Entsalzen?
- Bei der Proteinreinigung entstehen oft Lösungen, die in ihrer Ionenstärke oder Pufferzusammensetzung für den nächsten Reinigungsschritt ungeeignet sind.
- Daher ist die Abtrennung von Salzen und hydrophilen Verunreinigungen nötig.
Isolierung von Proteinen
- Es gibt über 25.000 Proteine in höheren Organismen.
- Eigenschaften wie Größe, Löslichkeit, Ladung und Bindungsaktivität werden zur Reinigung benutzt.
- Für die Charakterisierung von Proteinen werden einige mg gereinigtes Protein benötigt.
- Dialyse: Trennung von Proteinen und kleineren Molekülen (Lösungsaustausch).
- Gelchromatographie: Trennung basierend auf der Größe der Proteine.
- lonenaustauschchromatographie: Trennung nach der Nettoladung der Proteine.
- Affinitätschromatographie: Trennung basierend auf der Affinität der Proteine zu bestimmten chemischen Gruppen oder Liganden.
Isolierung von Protein – Reinigungsschritte
- Protein Rohextrakt wird zuerst vorfraktioniert (partielle Fällung, Solubilisierung, Organelle-Isolierung)
- Protein Fraktion 1 wird durch Pufferaustausch aufbereitet.
- Protein Fraktion 2 durch verschiedene Reinigungsschritte aufbereitet (Ausschluss-, lonenaustausch-, Affinitätschromatographie.
- Reinigungsschritt n führt zum gereinigten Protein.
Dialyse
- Am weitesten verbreitete Entsalzungsmethode.
- Prinzip basiert auf dem Größenausschlussprinzip.
- Semipermeable Membranen, kleine Moleküle und Ionen können passieren, größere Moleküle werden zurückgehalten.
- Semipermeable Membranen haben unterschiedliche Porengrößen (MWCO).
- MWCO ist das Molekulargewicht der Proteine, die zu 90% von der Membran ausgeschlossen werden.
Dialyse – Biophysikalische Prozesse bei der Dialyse
- Diffusion: Diffusionsfluss der gelösten Teilchen.
- Osmose: Diffusion der Lösungsmittelteilchen durch eine semipermeable Membran.
Dialyse – Wahl des richtigen Molekulargewichtsgrenzwerts (MWCO)
- MWCO ist ein Maß für die Retentionsleistung der Membran.
- Mindestens 90% der Partikel mit dem MWCO sollten zurückgehalten werden.
Dialyse - Wahl des richtigen Membranmaterials
- Dialysemembranen aus verschiedenen Materialien.
- Material sollte inert sein (keine Bindung an Proteine oder andere Substanzen).
- Berücksichtigung von pH-Wert, Lösungsmittelresistenz und Temperaturbereich.
- Beispiele für Materialien: Celluloseacetat, Cellulosenitrat, Polyamid, Polycarbonat, Polytetrafluorethylen (PTFE), Regenerierte Cellulose.
Dialyse - Biophysikalische Parameter der Proteine
- pH-Wert und Ionenkonzentration beeinflussen die Oberflächenladung von Proteinen.
- Ungünstige Bedingungen können zu Ausfällung von Proteinen führen (hydrophobe oder hydrophiler Wechselwirkungen).
Dialyse in der Praxis
- Puffer wird gerührt und gewechselt, um einen großen Konzentrationsgradienten an der Membranoberfläche zu erzeugen.
- Fortschritt der Entsalzung wird mittels Leitfähigkeitsmessung des Puffers überwacht.
- Bei weitgehender Entsalzung (Dialyse gegen Wasser) können Proteine wegen der niedrigen Ionenstärke ausfallen.
Dialyse in der Praxis - Vorgehensweise
- Proteinlösung in Dialysebeutel füllen, mit einer semipermeablen Membran.
- Dialysebeutel in ein Becherglas mit Pufferlösung geben.
- Bei Bedarf durch ständige Rührmethode den Konzentrationsgradienten erhöhen..
Chromotographie
- Trennmethode, um Komponenten einer Molekülmischung aufgrund ihrer Eigenschaften (Löslichkeit, Größe, Ladung, oder Funktion) zu trennen.
- Mobile Phase: Gase oder Flüssigkeiten (Gaschromatographie (GC), Flüssigkeitschromatographie (LC)).
- Stationäre Phase: Flüssigkeiten oder Festkörper.
Säulenchromatographie
- Stationäre Phase in einer Säule verpackt.
- Probenlösung (Mobile Phase) fließt durch die Säule.
- Moleküle in der Probe haben unterschiedliche Wechselwirkungen mit dem Füllmaterial, wodurch sie unterschiedlich lange in der Säule zurückgehalten werden.
- Trennung in Fraktionen.
Chromatographie - Theorie (Prinzip der Größenausschlusschromatographie)
- Nach Probenauftrag wandern unterschiedliche Komponenten mit unterschiedlicher Geschwindigkeit durch die Säule.
- Durch das Ausschlussvolumen (Vo) wird das Volumen zwischen den Partikeln beschrieben.
- Durch das innere Volumen (V1) wird das Volumen innerhalb der Poren der Partikel beschrieben.
- Das Gesamtvolumen (Vt) entspricht Vo + Vi.
- Detektion der eluierten Komponenten, wie Peaks im Chromatogramm.
Gelfiltrationchromatographie
- Auftrennung der Proteine nach Größe.
- Probe wird auf eine Säule aus porösen Kügelchen aufgetragen.
- Kleine Moleküle dringen in die Kügelchen ein, große nicht.
- Große Moleküle verlassen die Säule zuerst.
Chromatographie - Stationäre Phase
- Gepackte Trennsäulen (Metall, Kunststoff oder Glas) mit Füllmaterial (mit einheitlicher Größe).
- Poröse Partikel ermöglichen das Eindringen von Molekülen (vergrößern das Volumen für kleinere Moleküle).
- Vorteile der unterschiedlichen Oberflächen der Partikel, sorgen für unterschiedliche Wechselwirkungen der Analyten mit der stationären Phase.
lonenaustauschchromatographie
- Trennung nach der Nettoladung von Proteinen.
- Anionenaustauscher: Negativ geladene Proteine werden in Säulen mit positiv geladenen funktionellen Gruppen getrennt.
- Kationenaustauscher: Positiv geladene Proteine werden in Säulen mit negativ geladenen funktionellen Gruppen getrennt.
- Start mit einer ionengebundenen Matrix, die Proteinbindung auslöst.
- Elution der Proteine mittels Steigerung der Salzkonzentration.
Affinitätschromatographie
- Trennung basierend auf der hohen Affinität von Proteinen zu bestimmten chemischen Gruppen oder Liganden.
- Beispiel: Verwendung von Concanavalin A, welches eine Affinität zu Glucose besitzt.
- Elution der Proteine mittels Zugabe einer konzentrierten Lösung von Glucose.
Leitfähigkeit
- Messung der elektrischen Leitfähigkeit (µS) zur Bestimmung der lonenkonzentration in Lösungen.
- Die Leitfähigkeit ist abhängig von der Konzentration, der lonenladung und der Beweglichkeit der lonen.
Praktikum (Probe von Proteine-Teil I)
- a. Entsalzen einer Proteinlösung (Pellet) mittels Dialyse
- b. Entsalzen einer Proteinlösung (Überstand) mittels Gelchromatographie.
- c. Messung der Leitfähigkeit (Salzkonzentration) vor und nach Entsalzung.
- d. Bestimmung der Proteinkonzentration der Fraktionen mittels Bradford-Färbereaktion.
A. Dialyse
- 200 µl Probe (Pellet) in Dialysekapseln pipettieren.
- Dialysekapsel in Becherglas mit Wasser.
- Dialyse unter ständigem Rühren.
- Protein- und Salzkonzentration nach der Dialyse messen.
- Dialysekapsel wird für das nächste Praktikum eingefroren.
B. Gelchromatographie
- Fertig gepackte NAP-5 Säulchen (mit Sephadex G-25)
- Ausschlussgröße von 10 kDa.
- 100 µl Proteinlösung (Überstand) auf die Säule.
- Eluat in Mikrotiterplatte auffangen.
- Protein- und Salzkonzentration der Fraktionen bestimmen.
- Fraktionen mit hoher Proteinkonzentration für späteres Praktikum einfrieren.
C. Leitfähigkeitmessung
- Eichgerade für Ammoniumsulfat erstellen.
- Messung der Leitfähigkeit von Pellet, Überstand, 24 Fraktionen und Dialysat.
D. Proteinbestimmung
- Eichgerade für BSA erstellen, um die Absorption in mg/ml umzurechnen.
- Proteinkonzentration der Fraktionen mittels Bradford-Assay bestimmen.
Salzgehalt berechnen
- Proteinkonzentration und Salzkonzentration (in mM) der Proben sind bekannt.
- Ammoniumsulfat hat ein Molekulargewicht von 132,14 g/mol.
- Salzgehalt der Proben in µg Salz pro mg Protein berechnen
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Description
Dieses Quiz behandelt die wichtigsten Themen des Biochemiepraktikums im Wintersemester 2023/2024. Die Teilnehmer erfahren mehr über verschiedene Techniken der Proteinreinigung, einschließlich Denaturierung, Gelchromatographie und Elektrophorese. Teste dein Wissen über die Methoden zur Isolierung und Charakterisierung von Proteinen.