Parasitologie - Diagnostic Hématologique TP n°02

Les parasites sanguicoles peuvent être intracellulaires ou extracellulaires.

Les trypanosomes et les microfilaires sont des parasites sanguicoles extracellulaires mobiles.

Le moment du prélèvement est crucial car il doit correspondre à la période où le parasite est le plus abondant dans le sang.

<p>Les trois techniques de diagnostic direct des parasites sanguicoles sont : l’examen direct d’une goutte fraîche, l’examen sur frottis secs colorés et l’examen d’une goutte épaisse.</p> Signup and view all the answers

<p>L'examen indirect permet la détection d'anticorps ou d'antigènes spécifiques à un parasite dans le sang.</p> Signup and view all the answers

<p>Un frottis sec coloré permet une meilleure visualisation de la morphologie du parasite alors qu'une goutte épaisse est plus sensible pour détecter les parasites peu nombreux.</p> Signup and view all the answers

<p>Les plasmodies et les babésies sont des exemples de parasites sanguincoles intracellulaires.</p> Signup and view all the answers

<p>Les techniques de diagnostic en parasitologie sont essentielles pour identifier rapidement et précisément les infections parasitaires, permettant ainsi une prise en charge médicale adéquate et la mise en place de mesures de lutte contre la propagation des maladies.</p> Signup and view all the answers

<p>Les deux méthodes principales sont l'examen direct d'une goutte de sang fraîche et l'examen sur frottis secs colorés.</p> Signup and view all the answers

<p>Ces parasites sont mobiles, et leur mouvement est facilement observable à faible grossissement sous un microscope.</p> Signup and view all the answers

<p>Une petite goutte de sang est déposée à l'extrémité d'une lame. Une autre lame est utilisée pour étaler le sang en un mouvement rapide et continu, en formant un film mince et régulier. Le frottis est ensuite rapidement séché à l'air.</p> Signup and view all the answers

<p>La coloration au May-Grünwald Giemsa permet de colorer différentiellement les composants du sang (globules rouges, globules blancs, parasites) pour une meilleure visualisation et identification.</p> Signup and view all the answers

<p>La première étape est la fixation, qui utilise le colorant May-Grünwald pour fixer les cellules sur la lame. La deuxième étape est la coloration elle-même, qui utilise d'abord le May-Grünwald puis le Giemsa.</p> Signup and view all the answers

<p>Un frottis sanguin de bonne qualité doit être régulier, sans coupures, avec des bords parallèles et une extrémité arrondie. Il ne doit pas présenter de trous, de stries ou être trop épais, trop mince ou trop long.</p> Signup and view all the answers

<p>Laisser sécher à l'air permet au colorant de pénétrer et de se fixer correctement aux cellules, améliorant ainsi la qualité de la coloration et la visualisation.</p> Signup and view all the answers

<p>La coloration au Giemsa permet de colorer les parasites de manière spécifique, ce qui facilite leur identification et leur différenciation des autres éléments du sang. Elle permet également de visualiser les détails morphologiques du parasite, comme la forme, la taille et la structure.</p> Signup and view all the answers

<p>La coloration de Giemsa implique plusieurs étapes : prélever un frottis sanguin, le laisser sécher, le fixer, le colorer avec une solution de Giemsa pendant un certain temps, le rincer à l’eau distillée, puis le laisser sécher à l’air. Il est important de ne pas laisser le jet d’eau toucher directement le sang coloré pour éviter qu’il ne se détache de la lame.</p> Signup and view all the answers

<p>L’examen d’un frottis mince permet l’observation détaillée de la morphologie des parasites, tandis que l’examen d’une goutte épaisse est conçu pour augmenter la concentration de parasites, ce qui rend la détection plus facile, même si les détails morphologiques sont moins visibles.</p> Signup and view all the answers

<p>La préparation d’une goutte épaisse comprend : 1) prélever une grosse goutte de sang par ponction des capillaires cutanés. 2) Déposer la goutte sur une lame en lui imprimant des mouvements circulaires. 3) Laisser sécher 12 heures à l’abri de la poussière. 4) Déposer une goutte d’eau distillée et laisser agir 20 minutes (hémolyse). 5) Sécher. 6) Effectuer une coloration (May-Grünwald-Giemsa) puis observer au microscope.</p> Signup and view all the answers

<p>L’huile d’immersion est généralement utilisée avec un grossissement de x100, offrant ainsi une résolution maximale pour l’observation des détails fins des parasites sanguins.</p> Signup and view all the answers

<p>Il est recommandé d’attendre au moins 30 minutes avant d’examiner un frottis coloré par Giemsa au microscope pour permettre une bonne fixation et une coloration adéquate des parasites.</p> Signup and view all the answers

<p>Sécher la goutte épaisse à l’abri de la poussière est crucial car la poussière peut contaminer l’échantillon, interférer avec la coloration et compliquer l’identification des parasites.</p> Signup and view all the answers

<p>La figure 1 montre un <em>Plasmodium falciparum</em>, un parasite qui est l’agent responsable d’une forme grave de paludisme.</p> Signup and view all the answers

<p>L’étape de l’hémolyse consiste à lyser les globules rouges, augmentant ainsi la concentration des parasites et améliorant leur détection dans la goutte épaisse.</p> Signup and view all the answers

Parasites vivant dans le sang, tels que Plasmodium et Leishmania.

Procédé pour obtenir un échantillon sanguin pour le diagnostic.

Méthode d'analyse des parasites dans une goutte fraîche de sang.

Technique utilisée pour concentrer les parasites dans le sang.

Larves de certains parasites trouvées dans le sang, comme Wuchereria bancrofti.

Analyse sérologique pour détecter des anticorps ou antigènes.

Protozoaire responsable de la malaria, se trouvant dans le sang.

Parasite protozoaire qui peut infecter le sang et causer des maladies.

Parasites extracellulaires détectables dans le sang au microscope.

Échantillon de sang étalé sur une lame pour analyse microscopique.

Technique de coloration du frottis sanguin pour révéler les structures cellulaires.

Premier pas dans la coloration, immerger la lame dans le colorant May-Grünwald.

Étape finale après May-Grünwald, utilisée pour leurre les détails cellulaires.

Procédé de séchage de la lame après coloration pour une observation claire.

Un frottis doit être régulier, sans coupures ni défauts.

Analyse au microscope d'échantillons, comme les frottis, pour détecter des parasites.

Échantillon de sang teinté utilisé pour l'analyse microscopique.

Processus de dissolution des globules rouges pour libérer les parasites.

Temps donné à un frottis pour sécher avant la coloration.

Technique de coloration utilisée avant l'observation microscopique.

Augmentation de la taille d'une image au microscope, permettant une meilleure observation.