Examen Coproparasitario - Preguntas Clave

<p>Mezclada con orina (D)</p> Signup and view all the answers

<p>Para la extracción de grasas (C)</p> Signup and view all the answers

<p>Observación de la estructura de los parásitos (B)</p> Signup and view all the answers

<p>Asa bacteriológica (C)</p> Signup and view all the answers

<p>Solución salina isotónica (C)</p> Signup and view all the answers

<p>40-45°C (B)</p> Signup and view all the answers

<p>Citoplasma (A)</p> Signup and view all the answers

<p>Reactivo de Ballenger (A)</p> Signup and view all the answers

<p>Materia fecal fresca (B)</p> Signup and view all the answers

<p>300 Pm (A)</p> Signup and view all the answers

<p>3 horas (A)</p> Signup and view all the answers

<p>10x y 40x (C)</p> Signup and view all the answers

<p>0,5 g a 1 g (C)</p> Signup and view all the answers

<p>Tinción de Van Gool con Uvitex 2b o Calcofluor (D)</p> Signup and view all the answers

<p>Técnica del Cytospin (MR) (C)</p> Signup and view all the answers

<p>Todas las anteriores (D)</p> Signup and view all the answers

<p>Semiácido resistencia (B)</p> Signup and view all the answers

<p>Tinción de hematoxilina férrica de Heidenhain (D)</p> Signup and view all the answers

<p>Nuevas técnicas de tinción simples y rápidas (C)</p> Signup and view all the answers

<p>Técnica de Baermann (A)</p> Signup and view all the answers

<p>Son más simples, rápidas y fáciles de reproducir (C)</p> Signup and view all the answers

<p>Aumentar la concentración de elementos parasitarios para una mayor sensibilidad en la observación. (D)</p> Signup and view all the answers

<p>Materiales plásticos. (D)</p> Signup and view all the answers

<p>Mayor bioseguridad y reducción del riesgo de infección. (B)</p> Signup and view all the answers

<p>Ritchie o Carles (D)</p> Signup and view all the answers

<p>Maceración (C)</p> Signup and view all the answers

<p>Microscopía de luz transmitida (A)</p> Signup and view all the answers

<p>Examen macroscópico (B)</p> Signup and view all the answers

<p>Macerar la muestra con agua para separar los restos vegetales y los parásitos. (B)</p> Signup and view all the answers

<p>Giardia lamblia (C)</p> Signup and view all the answers

<p>133 millones (D)</p> Signup and view all the answers

<p>Pueden causar problemas digestivos y de crecimiento. (D)</p> Signup and view all the answers

<p>Se desconoce la verdadera entidad de la enfermedad. (B)</p> Signup and view all the answers

<p>Giardiasis (A)</p> Signup and view all the answers

<p>La gravedad de las enteroparasitosis como problema de salud mundial. (C)</p> Signup and view all the answers

<p>Efectos que son difíciles de detectar y pueden desarrollarse a largo plazo. (D)</p> Signup and view all the answers

<p>Brindar información estadística sobre la prevalencia de las enteroparasitosis a nivel mundial. (C)</p> Signup and view all the answers

<p>Aislar e incrementar la concentración de parásitos o sus huevos. (C)</p> Signup and view all the answers

<p>La cromatina nuclear. (D)</p> Signup and view all the answers

<p>Diferenciar las estructuras del parásito. (B)</p> Signup and view all the answers

<p>Microscopía óptica de campo claro con lente de inmersión. (A)</p> Signup and view all the answers

<p>Clarificar el preparado. (C)</p> Signup and view all the answers

<p>Conservar la muestra. (B)</p> Signup and view all the answers

<p>1, 6, 9, 3, 4, 7, 5, 8 (B)</p> Signup and view all the answers

<p>Rojo. (C)</p> Signup and view all the answers

Enfermedad causada por el parásito Ascaris lumbricoides, afectando a millones de personas.

Infección intestinal provocada por el parásito Trichuris trichiura.

Enfermedad por anquilostoma que causa anemia al alimentarse de sangre.

Infección intestinal causada por el protozoo Giardia lamblia, común en aguas no tratadas.

Infección intestinal causada por el protozoo Entamoeba histolytica, que puede causar disentería.

Impactos negativos en el crecimiento, nutrición y desarrollo funcional, especialmente en niños.

Aunque baja, genera miles de muertes anualmente a causa de infecciones por parásitos intestinales.

Niños, especialmente niñas y mujeres, son los más afectados por enteroparasitosis.

Cantidad de materia fecal necesaria para el examen, debe ser más de 50 g.

La muestra debe mantenerse en heladera hasta 8 horas.

La muestra debe estar rotulada con nombre del paciente y fecha de emisión.

Se usa 0,05 ml de solución salina para la observación de la muestra.

Técnicas como Negro de Clorazol, Kinyoun y Calcofluor se utilizan para colorar muestras.

Métodos como Ritchie o Faust se emplean para mejorar la detección de parásitos.

Se realiza con acetato de etilo en lugar de éter sulfúrico durante el análisis.

Uso de técnicas especiales para visualizar estructuras dentro de las células.

Instrumento que permite observar elementos pequeños como huevos o larvas de helmintos.

Técnica de enriquecimiento donde los parásitos se concentran en la parte inferior de un recipiente.

Técnica de enriquecimiento que utiliza soluciones especiales para hacer flotar elementos parasitarios.

Análisis de muestras bajo el microscopio sin tratamiento previo para observar parásitos.

Observación de parásitos visibles a simple vista, sin necesidad de microscopio.

Técnica de sedimentación específica para examinar muestras parasitarias en feces.

Método de flotación utilizado para identificar parásitos en muestras fecales.

Uso de un microscopio con lente de inmersión a 100x para observar muestras.

Macerar muestras en etanol al 70% con iodo de D’Antonioni para facilitar la observación.

Colorante utilizado en la preparación de muestras durante 10 minutos para mejorar la visibilidad.

Se añade alcohol etílico al 90%, acidificado, para la etapa de diferenciación de muestras.

Proceso de eliminación de agua usando alcohol absoluto para preparar muestras.

Se utiliza xilol para aclarar las muestras y mejorar la observación final.

Un paso final para fijar las preparaciones permanentes utilizando Permount.

Estructura celular que toma coloración rojiza en la observación microscópica según el proceso empleado.

Técnica de tinción utilizada para visualizar parásitos en microscopio.

Enteroparásito caracterizado por ooquistes de 7 a 9 micrómetros de diámetro.

Grupo de parásitos pequeños con esporas que son difíciles de detectar.

Método de tinción que utiliza Uvitex 2b o Calcofluor para identificar parásitos.

Método tradicional de coloración para observar protozoarios, menos utilizado hoy.

Técnica de concentración especial para mejorar la detección de parásitos.

Estructuras formadas por ciertos protozoos que son resistentes en el entorno.

Métodos más simples y rápidos que reemplazan coloraciones tradicionales en diagnóstico.

Método para detectar larvas en muestras fecales frescas utilizando un embudo y mallas de gasa.

Técnica que tiñe el citoplasma de protozoarios de rojo-azulado para mejor visualización.

Proceso de examinar la muestra tratada después de colorear con intención de identificar parásitos.

Material sólido obtenido de heces que se analiza para identificar larvas o quistes parasitarios.

Método para teñir quistes vegetativos en materia fecal para su observación directa al microscopio.

Proceso de separar componentes mediante rotación rápida, utilizado para obtener sedimentos fecales.

Proceso de pasar materia fecal a través de una malla para eliminar partículas grandes y concentrar parásitos.