Culture Cellulaire Animale: Principes et Procédés

Technique permettant de maintenir des cellules isolées dans des conditions de laboratoire favorables à leur survie et à leur croissance.

Technique permettant de maintenir des cellules isolées dans des conditions de laboratoire favorables à leur survie et à leur croissance.

Milieu de culture contenant des éléments essentiels comme le potassium, le calcium, le phosphate, ainsi que des facteurs de croissance spécifiques à l'espèce ou au génotype bactérien.

Fusion de deux cellules pour en créer une nouvelle, viable et fonctionnelle.

Développement de protéines recombinantes grâce à l'ADN recombinant, permettant la modification génétique des protéines.

Les virus ne peuvent pas se multiplier sur des milieux chimiques, nécessitent d'abord une culture cellulaire pour se développer.

Certaines bactéries, comme le Mycobacterium leprae, ne se multiplient pas en culture et ne font que survivre.

Études approfondies sur les milieux de culture pour améliorer la survie et la multiplication des cellules.

Une lignée cellulaire immortelle issue de cellules épithéliales du rein de singe vert. Elle a été immortalisée par des conditions de culture particulières (ex : haute concentration en calcium) et a un caryotype modifié (aneuploïde).

Un processus qui transforme les cellules normales en cellules tumorales. Il est souvent associé à l'activation d'oncogènes.

Des gènes qui peuvent conduire au développement du cancer lorsqu'ils sont activés ou mutés.

Un type de culture cellulaire qui utilise les premières cellules prélevées directement d'un tissu ou d'un organe à l'état frais.

Les cellules cultivées en laboratoire peuvent provenir des trois feuillets embryonnaires : endoderme, mésoderme et ectoderme.

Un morceau de tissu ou d'organe utilisé pour lancer une culture primaire.

Cellules qui ont la capacité de se diviser indéfiniment en laboratoire. Elles ont subi des modifications génétiques.

Un modèle animal immunodéficient, utilisé pour étudier la croissance tumorale in-vivo.

Processus de séparation des cellules d'un tissu en utilisant des enzymes protéolytiques comme la collagénase ou la trypsine. Ces enzymes dégradent la matrice extracellulaire, libérant les cellules.

Le processus de mise en culture des cellules dissociées pour la première fois dans un milieu de culture adapté sur un support artificiel.

Milieu artificiel qui fournit les nutriments et les conditions nécessaires à la survie et à la croissance des cellules en culture.

Type de culture cellulaire où les cellules sont déposées sur un support solide comme du plastique ou du verre pour leur permettre de croître et de s'organiser.

Type de culture cellulaire où les cellules restent en suspension dans le milieu de culture sans avoir besoin d'un support solide.

Propriété des cellules en culture adhérente qui empêche leur prolifération une fois qu'elles ont saturé la surface disponible.

Phase de croissance limitée des cultures primaires. Les cellules peuvent se multiplier temporairement, mais cette période est courte.

Processus de mort cellulaire programmée, déclenché par les cellules lorsqu'elles ne sont pas attachées à un support dans une culture adhérente.

La phase pendant laquelle les cellules se multiplient rapidement, leur nombre augmentant de façon exponentielle.

Le moment où la croissance rapide des cellules ralentit, marquant le début du déclin.

La phase où les cellules vieillissent et meurent, la prolifération étant dépassée par la mort cellulaire.

Des lignées cellulaires qui peuvent se multiplier indéfiniment, contrairement aux cultures primaires qui finissent par vieillir.

Un processus qui rend les cellules immortelles, leur permettant de se multiplier indéfiniment.

Une anomalie chromosomique où les chromosomes ne sont pas présents en nombre normal, ce qui peut induire l'immortalisation.

Un processus qui permet aux cellules transformées de se développer sans être attachées à une surface, comme du plastique ou du verre.

La capacité d'une cellule à se diviser et à produire de nouvelles cellules, permettant ainsi la formation de cultures cellulaires. Cette capacité est limitée pour les lignées semi-continues.

Le processus naturel de vieillissement et de déclin des cellules. Les cellules semi-continues finissent par perdre leurs fonctions et leurs caractéristiques avec le temps, conduisant à leur mort par apoptose.

Le processus de création de cultures cellulaires homogènes à partir d'une seule cellule. Cette cellule mère donne naissance à une colonie de cellules génétiquement identiques.

Des cellules qui peuvent se diviser indéfiniment sous certaines conditions. Elles ne sont pas soumises à la sénescence cellulaire et peuvent former des cultures cellulaires pérennes.

Des cellules issues de tumeurs, elles sont déjà naturellement immortalisées et se divisent sans limite.

Des cellules capables de se différencier en différents types de cellules et de se multiplier indéfiniment. Isolées et cultivées, elles donnent naissance à des cultures clonales.

L'utilisation de cultures cellulaires, notamment les lignées semi-continues, pour étudier des processus biologiques sur une période prolongée tout en maintenant une certaine homogénéité cellulaire.

Le processus de repiquage de cellules issues de cultures primaires dans un milieu adapté à leur survie et leur prolifération.

Le sérum de veau fœtal (SVF) est un additif crucial dans les milieux de culture cellulaire. Il apporte un large éventail d'éléments essentiels, dont des facteurs de croissance, des hormones, des oligo-éléments et des facteurs d'attachement, qui favorisent la croissance et la survie des cellules.

L'albumine et la transferrine sont des protéines de transport qui facilitent le transport des nutriments essentiels et des métaux, comme le fer, vers les cellules cultivées.

L'insuline et l'IGF (Insulin Growth Factor) sont des hormones cruciales pour la croissance et la prolifération cellulaire. Elles agissent en régulant l'absorption du glucose et en stimulant la synthèse protéique.

Le collagène est une protéine structurelle présente dans les tissus conjonctifs. Il est utilisé pour recouvrir les supports de culture et favoriser l'adhésion des cellules, améliorant ainsi leur croissance et leur fonctionnalité.

Les antioxydants comme la vitamine E et la vitamine C protègent les cellules du stress oxydatif, un processus qui peut endommager les cellules et les empêcher de fonctionner correctement.

Les antibiotiques, comme la pénicilline-streptomycine, sont souvent ajoutés aux milieux de culture pour prévenir les infections bactériennes. Cependant, leur utilisation est controversée car ils ralentissent la croissance cellulaire et ne sont pas recommandés pour les cultures destinées à être réinjectées chez des patients.

Le rouge de phénol, un indicateur de pH, est souvent ajouté aux milieux de culture. Il change de couleur en fonction de l'acidité du milieu, permettant de suivre les conditions de culture de manière visuelle.

Le sérum offre plusieurs avantages, notamment une grande richesse en éléments essentiels, une protection contre les toxines et une action tampon contre l'acidification du milieu. Cependant, il présente également des limites, notamment sa variabilité et sa composition complexe.