Techniques d'Imagerie en Recherche Cancéreuse

Technique utilisant des anticorps marqués par des fluorochromes pour détecter des antigènes spécifiques dans les cellules et les tissus.

Méthodes permettant de visualiser plusieurs cibles simultanément dans un seul échantillon.

Processus de capture d'images à partir de techniques d'immunofluorescence.

Permet la caractérisation moléculaire approfondie des cellules et tissus.

Utilisée en laboratoire pour l'analyse cellulaire et tissulaire.

Le système immunitaire est composé de deux branches principales qui travaillent ensemble pour protéger l'organisme des agents pathogènes: l'immunité innée et l'immunité adaptative.

Première ligne de défense contre les infections. Comprend des barrières physiques comme la peau et des cellules immunitaires comme les macrophages.

Développe une réponse ciblée contre des antigènes spécifiques. Implique les lymphocytes B qui produisent des anticorps et les lymphocytes T qui effectuent une réponse cellulaire.

Les anticorps se lient aux antigènes, empêchant les agents pathogènes d'infecter les cellules. Ils activent également la phagocytose et le système du complément.

Les anticorps atteignent généralement leur pic de concentration plusieurs semaines après l'infection ou la vaccination.

Une technique qui identifie des protéines spécifiques dans un échantillon en les séparant par leur taille et en utilisant des anticorps pour les détecter.

Une méthode pour mesurer la quantité d'anticorps ou d'antigènes dans un échantillon en utilisant une réaction enzymatique qui produit un signal mesurable.

Une technique qui utilise des anticorps pour isoler et purifier des protéines spécifiques à partir d'un mélange complexe.

Une technique utilisée pour analyser et trier des cellules individuelles en fonction de leurs propriétés physiques et chimiques.

Une approche thérapeutique utilisant des anticorps pour traiter des maladies, notamment le cancer.

Des protéines produites par le système immunitaire pour identifier et neutraliser des agents pathogènes ou des substances étrangères (antigènes).

Ils possèdent une "région variable" qui s'adapte à un antigène spécifique et une "région constante" qui définit leur type.

Les anticorps neutralisent directement les agents pathogènes, attirent les macrophages pour la phagocytose et activent le complément pour détruire les cellules infectées.

Les anticorps IgG sont les plus abondants et participent à l'immunité à long terme. Les IgM sont les premiers à être produits lors d'une infection nouvelle.

Ils sont utilisés dans des techniques de laboratoire comme le Western blot, l'ELISA et l'immunoprécipitation pour identifier et quantifier des protéines.

Méthodes utilisant des anticorps marqués avec des fluorochromes pour visualiser des cibles spécifiques dans les cellules ou tissus.

Les fluorochromes, des molécules qui émettent de la lumière lorsqu'elles sont excitées par une certaine longueur d'onde, permettent de visualiser les anticorps et ainsi les cibles auxquelles ils se lient.

Technique d'imagerie qui permet de visualiser plusieurs cibles simultanément dans un seul échantillon, grâce à l'utilisation de différentes couleurs de fluorochromes.

Étape importante du protocole d'immunofluorescence, comprenant la fixation des échantillons, le blocage des sites non spécifiques et le traitement avec les anticorps marqués.

L'analyse des résultats implique l'interprétation des images obtenues, la quantification des signaux et la détermination de la localisation des cibles.

Substance ajoutée aux vaccins pour renforcer leur efficacité à déclencher une réponse immunitaire.

Capacité d'un antigène à activer le système immunitaire et provoquer une production d'anticorps.

Signal envoyé par les adjuvants au corps, imitant une infection et activant le système immunitaire.

Fonctionnement des adjuvants pour booster la réponse immunitaire, la rendant plus forte et durable.

Différents types d'adjuvants provenant de sources variées, tels que des virus, des bactéries ou des toxines.

La chromatographie d'affinité est une technique qui permet d'isoler les anticorps à partir d'antigènes utilisés lors de l'immunisation. Cette technique utilise des ligands fixés sur un support solide qui se lient spécifiquement à la molécule d'intérêt.

L'antigène est fixé à une matrice solide, comme la résine d'agarose. Ensuite, l'échantillon contenant les anticorps est introduit dans la colonne. Les anticorps spécifiques à l'antigène se lient à celui-ci, tandis que les autres passent à travers la colonne. Pour récupérer les anticorps liés, un tampon d'élution est utilisé pour les détacher de la matrice.

La purification des antigènes est similaire à l'isolement des anticorps, mais le processus est inversé. L'anticorps est immobilisé, et c'est l'antigène qui est capturé et ensuite récupéré.

Les fragments variables de chaîne unique (scFvs) et les conjugués anticorps-médicament (ADCs) sont des outils utilisés dans des applications thérapeutiques et diagnostiques. Les scFvs sont des fragments d'anticorps qui peuvent être utilisés pour cibler des cellules spécifiques, tandis que les ADCs combinent un anticorps avec un médicament pour traiter la maladie.

Les anticorps ont de nombreuses applications en recherche et en médecine. Ils sont utilisés dans des techniques de laboratoire comme le Western blot, l'ELISA et l'immunoprécipitation pour identifier et quantifier les protéines. De plus, ils constituent la base de la cytométrie en flux, du marquage cellulaire et tissulaire et des thérapies par anticorps.

Les anticorps monospecifiques se lient à un antigène spécifique sur les cellules cancéreuses, activant divers mécanismes pour détruire les cellules, comme la perturbation des signaux de survie, l'activation des cellules immunitaires ou la cascade de complément.

Les anticorps bispecifiques se lient à deux antigènes différents, permettant de rediriger les cellules T vers les cellules cancéreuses pour les détruire. Certains peuvent également provoquer une élimination directe des cellules cancéreuses.

Les conjugués anticorps-médicament combinent un anticorps avec un médicament cytotoxique, délivrant ce dernier directement aux cellules cancéreuses.

La thérapie par anticorps utilise des anticorps pour cibler et éliminer les cellules cancéreuses en utilisant des mécanismes variés. Les exemples incluent la cytotoxicité dépendante des anticorps, l'activation du système immunitaire et la phagocytose.

L'immunisation passive est une méthode offrant une protection immédiate contre les infections en transférant des anticorps préformés d'un individu à un autre.

Les anticorps préformés sont transférés d'un individu à un autre, ce qui procure une réponse immunitaire rapide sans délai de développement.

L'immunisation passive offre une protection immédiate, mais sa durée est limitée. Elle est appliquée dans des situations d'urgence où une protection rapide est indispensable.

L'immunisation passive peut atténuer la sévérité des infections en réduisant les symptômes et leurs effets négatifs. Elle est particulièrement utile pour traiter les infections graves.

L'immunisation passive trouve des applications cliniques et de recherche pour traiter certaines infections et développer des thérapies basées sur des anticorps.

Méthode pour quantifier des antigènes ou des anticorps dans un échantillon. On utilise une réaction enzymatique qui produit un signal mesurable, qui permet de déterminer la quantité de l'analyte.

L'immunoprécipitation (IP) est une technique de laboratoire utilisée pour isoler et purifier des protéines spécifiques à partir d'un mélange complexe. Elle repose sur l'affinité d'un anticorps spécifique envers son antigène, facilitée par l'utilisation de billes magnétiques ou d'agarose.

Des anticorps spécifiques se lient à la protéine d'intérêt, la séparant du reste du lysat cellulaire. Ces anticorps sont conçus pour cibler des protéines spécifiques afin de garantir la spécificité de l'immunoprécipitation.

Des billes recouvertes d'anticorps permettent une séparation facile des complexes immunitaires. Elles facilitent la récupération de la protéine cible après la liaison.

L'immunoprécipitation est utilisée dans diverses applications, notamment pour la détection de protéines par Western Blot, la quantification des protéines par ELISA, l'analyse cellulaire par cytométrie en flux, la visualisation de protéines dans les tissus et les thérapies par anticorps.

L'immunoprécipitation est une technique d'analyse puissante qui permet d'étudier les interactions protéine-protéine, d'identifier de nouvelles protéines, d'étudier la modification des protéines, et plus encore.

Des anticorps spécifiques à un épitope, produits en quantités illimitées par des lignées cellulaires immortelles, avec une faible réaction croisée.

Des anticorps dirigés contre plusieurs épitopes d'un antigène, obtenus par immunisation animale.

Des cellules hybrides formées par la fusion de cellules B productrices d'anticorps avec des cellules myélomateuses. Elles produisent en continu des anticorps monoclonaux.

Techniques pour identifier les hybridomes produisant des anticorps spécifiques (ex. ELISA), puis isoler des lignées monocellulaires pour produire des anticorps uniformes et spécifiques.

Cultures in vitro (1 µg/ml) et cultures in vivo (ascite, 1-10 mg/ml) permettent la production en grand volume d'anticorps.

Les méthodes d'immunofluorescence utilisent des anticorps marqués par des fluorochromes pour détecter des cibles spécifiques dans les cellules ou les tissus.

Les fluorochromes sont des composés fluorescents attachés aux anticorps pour permettre la visualisation des cibles d'intérêt sous un microscope.

L'immunofluorescence directe utilise un anticorps primaire conjugué à un fluorochrome, tandis que l'immunofluorescence indirecte utilise un anticorps secondaire fluorescent pour détecter l'anticorps primaire.

L'immunofluorescence directe est une technique rapide mais moins sensible, alors que l'immunofluorescence indirecte offre une plus grande flexibilité et sensibilité.

Ces techniques permettent une analyse précise et sensible des interactions biologiques dans les cellules et les tissus.

La biotine-avidine est une technique biochimique qui utilise l'interaction très forte entre la biotine et l'avidine (ou la streptavidine) pour amplifier les signaux et faciliter la détection de protéines dans diverses applications.

La biotine est liée de manière covalente à un anticorps, puis l'avidine se lie spécifiquement à la biotine. L'avidine est ensuite conjuguée à un fluorochrome pour la détection.

Une molécule de biotine peut se lier à plusieurs molécules d'avidine, et chaque molécule d'avidine peut être conjuguée à de nombreux fluorochromes. Cela amplifie le signal détectable.

La biotine-avidine est utilisée dans des techniques comme l'immunohistochimie, l'immunofluorescence, la PCR et le Western blot pour renforcer la détection de signaux faibles, particulièrement pour des cibles de faible abondance.

La biotine-avidine est une technique puissante qui permet de détecter et d'étudier des protéines avec une grande sensibilité et spécificité.

Technique de production d'anticorps spécifiques à un antigène par des hybridomes, des cellules immortelles capables de produire des anticorps en grandes quantités.

Les protéines fluorescentes, comme la GFP, émettent de la lumière lorsqu'elles sont excitées par une source lumineuse. Elles sont utilisées en recherche pour visualiser et suivre les processus biologiques dans les cellules.

La GFP a été découverte initialement chez la méduse Aequorea victoria. Sa structure et ses propriétés uniques lui permettent de fluorescer.

Différentes variantes de GFP, avec des couleurs différentes (ex.: YFP, RFP), sont adaptées à diverses applications de recherche.

Les protéines fluorescentes sont utilisées pour suivre l'expression génique, visualiser les interactions protéiques et étudier le développement cellulaire et la dynamique cellulaire.

La protéine fluorescente absorbe la lumière à une longueur d'onde spécifique et émet de la lumière à une longueur d'onde plus longue. Cela est dû à des modifications chimiques dans la structure de la protéine.