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Questions and Answers
La structure de l’ARN polymérase mitochondriale est très similaire à celles des ARN polymérases nucléaires.
La structure de l’ARN polymérase mitochondriale est très similaire à celles des ARN polymérases nucléaires.
False
Les deux plus grandes sous-unités de l’ARN polymérase II constituent le site actif de cette enzyme.
Les deux plus grandes sous-unités de l’ARN polymérase II constituent le site actif de cette enzyme.
True
Les gènes codant pour les sous-unités des facteurs généraux de la transcription sont exprimés dans les différents types cellulaires de l’organisme.
Les gènes codant pour les sous-unités des facteurs généraux de la transcription sont exprimés dans les différents types cellulaires de l’organisme.
True
Le domaine C-terminal de la grande sous-unité de l’ARN polymérase II est une répétition de 52 sérines successives pouvant être phosphorylées.
Le domaine C-terminal de la grande sous-unité de l’ARN polymérase II est une répétition de 52 sérines successives pouvant être phosphorylées.
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Le taux d’erreur d’incorporation pour les ARN polymérases est, comme pour les ADN polymérases, de l’ordre de 10-7.
Le taux d’erreur d’incorporation pour les ARN polymérases est, comme pour les ADN polymérases, de l’ordre de 10-7.
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Les ARN polymérases sont des enzymes processives, pouvant catalyser plusieurs réactions enzymatiques successives sans se dissocier de leur substrat.
Les ARN polymérases sont des enzymes processives, pouvant catalyser plusieurs réactions enzymatiques successives sans se dissocier de leur substrat.
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Les facteurs généraux de la transcription restent associés à l’ARN polymérase II lors de l’élongation.
Les facteurs généraux de la transcription restent associés à l’ARN polymérase II lors de l’élongation.
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Les facteurs généraux de la transcription positionnent l’ARN polymérase II sur le promoteur pour définir le site d’initiation de la transcription.
Les facteurs généraux de la transcription positionnent l’ARN polymérase II sur le promoteur pour définir le site d’initiation de la transcription.
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Après l’épissage, un complexe protéique reste associé aux jonctions d’exons sur l’ARNm mature.
Après l’épissage, un complexe protéique reste associé aux jonctions d’exons sur l’ARNm mature.
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Les snRNA s’associent par complémentarité de bases aux sites consensus d’épissage sur le brin d’ADN matriciel.
Les snRNA s’associent par complémentarité de bases aux sites consensus d’épissage sur le brin d’ADN matriciel.
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Un même site consensus d’épissage sur le pré-ARNm peut être reconnu successivement pas différents snRNA.
Un même site consensus d’épissage sur le pré-ARNm peut être reconnu successivement pas différents snRNA.
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Le spliceosome est formé par l’association de différentes snRNP.
Le spliceosome est formé par l’association de différentes snRNP.
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L’association des histones à l’ADN régule la compaction de la chromatine.
L’association des histones à l’ADN régule la compaction de la chromatine.
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Les gènes codant pour les histones canoniques sont très fortement transcrits pendant la phase S du cycle cellulaire.
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Les complexes de remodelage de la chromatine vont créer une région déplétée en nucléosomes aux promoteurs des gènes non transcrits.
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La formation de l’hétérochromatine constitutive est associée à une acétylation de la lysine 9 de l’histone H3 (H3K9ac).
La formation de l’hétérochromatine constitutive est associée à une acétylation de la lysine 9 de l’histone H3 (H3K9ac).
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Les promoteurs, comme les enhancers, peuvent agir dans les deux orientations.
Les promoteurs, comme les enhancers, peuvent agir dans les deux orientations.
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Les enhancers ne contiennent qu’un site de liaison unique pour un activateur transcriptionnel spécifique.
Les enhancers ne contiennent qu’un site de liaison unique pour un activateur transcriptionnel spécifique.
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Un activateur transcriptionnel peut se fixer à de nombreux sites spécifiques dispersés sur le génome.
Un activateur transcriptionnel peut se fixer à de nombreux sites spécifiques dispersés sur le génome.
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Pour les activateurs transcriptionnels, la formation d’homo-dimères diminue la spécificité de reconnaissance des séquences régulatrices.
Pour les activateurs transcriptionnels, la formation d’homo-dimères diminue la spécificité de reconnaissance des séquences régulatrices.
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Le complexe TFIID permet la formation de la bulle transcriptionnelle et la méthylation des dinucléotides CpG.
Le complexe TFIID permet la formation de la bulle transcriptionnelle et la méthylation des dinucléotides CpG.
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Lors de l’élongation de la transcription, l’ARN polymérase II catalyse l’incorporation d’environ 50 nucléotides par seconde.
Lors de l’élongation de la transcription, l’ARN polymérase II catalyse l’incorporation d’environ 50 nucléotides par seconde.
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Les enhancers actifs sont le plus souvent contenus dans des îlots CpG.
Les enhancers actifs sont le plus souvent contenus dans des îlots CpG.
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L’ARN polymérase II est une enzyme ayant une faible processivité.
L’ARN polymérase II est une enzyme ayant une faible processivité.
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Un facteur de transcription donné reconnait une séquence d’environ 20 paires de vases, présente une seule fois dans le génome.
Un facteur de transcription donné reconnait une séquence d’environ 20 paires de vases, présente une seule fois dans le génome.
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Les activateurs et coactivateurs recrutés sur un enhancers modifient la chromatine au niveau du promoteur qu’ils contrôlent.
Les activateurs et coactivateurs recrutés sur un enhancers modifient la chromatine au niveau du promoteur qu’ils contrôlent.
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Un enhancer ne peut fixer qu’un facteur de transcription unique car il ne contient qu’un seul site de liaison par un facteur de transcription.
Un enhancer ne peut fixer qu’un facteur de transcription unique car il ne contient qu’un seul site de liaison par un facteur de transcription.
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Les complexes de modification d’histones mettent en place une région déplétée en nucléosomes au promoteur d’un gène actif.
Les complexes de modification d’histones mettent en place une région déplétée en nucléosomes au promoteur d’un gène actif.
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L’épissage alternatif ne concerne qu’une minorité de gènes ayant un grand nombre d’exons.
L’épissage alternatif ne concerne qu’une minorité de gènes ayant un grand nombre d’exons.
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Un épissage alternatif entraine toujours un décalage du cadre de lecture.
Un épissage alternatif entraine toujours un décalage du cadre de lecture.
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La fixation de facteurs protéiques sur la coiffe et sur la séquence polyA stabilise les ARNm en empêchant l’action d’exonucléases.
La fixation de facteurs protéiques sur la coiffe et sur la séquence polyA stabilise les ARNm en empêchant l’action d’exonucléases.
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La coiffe en 5’ et la séquence polyA en 3’ ont un rôle pour l’export des ARNm et pour la traduction des ARNm en protéines.
La coiffe en 5’ et la séquence polyA en 3’ ont un rôle pour l’export des ARNm et pour la traduction des ARNm en protéines.
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Les ARN ribosomiques jouent un rôle direct dans la synthèse de la liaison peptidique.
Les ARN ribosomiques jouent un rôle direct dans la synthèse de la liaison peptidique.
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La conversion du groupement hydroxyle 2’ en groupement O-méthyl est une modification fréquente des ARN ribosomiques.
La conversion du groupement hydroxyle 2’ en groupement O-méthyl est une modification fréquente des ARN ribosomiques.
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Les ARN ribosomiques 18S et 28S sont produits à partir d’un ARN précurseur unique via un mécanisme d’épissage.
Les ARN ribosomiques 18S et 28S sont produits à partir d’un ARN précurseur unique via un mécanisme d’épissage.
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Les snoARN possèdent une fonction enzymatique qui leur permet de modifier les ARN ribosomiques au niveau de sites spécifiques.
Les snoARN possèdent une fonction enzymatique qui leur permet de modifier les ARN ribosomiques au niveau de sites spécifiques.
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Les ARN ribosomiques jouent un rôle direct dans la synthèse de la liaison peptidique.
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La conversion du groupement hydroxyle 2’ en groupement O-méthyl est une modification fréquente des ARN ribosomiques.
La conversion du groupement hydroxyle 2’ en groupement O-méthyl est une modification fréquente des ARN ribosomiques.
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Les ARN ribosomiques 18S et 28S sont produits à partir d’un ARN précurseur unique via un mécanisme d’épissage.
Les ARN ribosomiques 18S et 28S sont produits à partir d’un ARN précurseur unique via un mécanisme d’épissage.
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Les snoARN possèdent une fonction enzymatique qui leur permet de modifier les ARN ribosomiques au niveau de sites spécifiques.
Les snoARN possèdent une fonction enzymatique qui leur permet de modifier les ARN ribosomiques au niveau de sites spécifiques.
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5’…AC(GCAGTATAATCA)TCTGCGGTCCAGACGCTGACTAGAATAAACGA…3’ Le promoteur est indiqué entre parenthèses et le site d’initiation de la transcription, désigné +1, est souligné, quelle(s) est (sont) la (ou les) affirmation(s) EXACTE(S) ?
5’…AC(GCAGTATAATCA)TCTGCGGTCCAGACGCTGACTAGAATAAACGA…3’ Le promoteur est indiqué entre parenthèses et le site d’initiation de la transcription, désigné +1, est souligné, quelle(s) est (sont) la (ou les) affirmation(s) EXACTE(S) ?
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La synthèse de l’ARNm se fait dans le même sens que celui de l’ADN matrice, de 5’ vers 3’.
La synthèse de l’ARNm se fait dans le même sens que celui de l’ADN matrice, de 5’ vers 3’.
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La synthèse de l’ARN se fait à partir du brin codant de l’ADN.
La synthèse de l’ARN se fait à partir du brin codant de l’ADN.
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L’ARN polymérase et l’ADN polymérase ont de nombreux points communs tels que la formation de la liaison 3’-5’ phosphodiester et le besoin d’amorce pour débuter la synthèse.
L’ARN polymérase et l’ADN polymérase ont de nombreux points communs tels que la formation de la liaison 3’-5’ phosphodiester et le besoin d’amorce pour débuter la synthèse.
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L’ARN polymérase doit avoir une progressivité absolue, la même enzyme commence et termine la molécule sans se dissocier de l’ADN matriciel.
L’ARN polymérase doit avoir une progressivité absolue, la même enzyme commence et termine la molécule sans se dissocier de l’ADN matriciel.
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L’ADN méthyltransférase est une enzyme qui reconnait spécifiquement les paires de bases CpG.
L’ADN méthyltransférase est une enzyme qui reconnait spécifiquement les paires de bases CpG.
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Les ADN méthyltransférases catalysent la méthylation de la cytosine d’un dinucléotide CG.
Les ADN méthyltransférases catalysent la méthylation de la cytosine d’un dinucléotide CG.
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La méthylation se fait en position 3 de la cytosine afin d’obtenir la 3 méthylcytosine.
La méthylation se fait en position 3 de la cytosine afin d’obtenir la 3 méthylcytosine.
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Les îlots CpG sont des régions du génome dont la régulation influence le taux d’ARN messager cellulaire.
Les îlots CpG sont des régions du génome dont la régulation influence le taux d’ARN messager cellulaire.
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Il existe 4 histones canoniques qui peuvent subir de très nombreuses modifications post-traductionnelles telles que des acétylations ou des méthylations sur des lysines.
Il existe 4 histones canoniques qui peuvent subir de très nombreuses modifications post-traductionnelles telles que des acétylations ou des méthylations sur des lysines.
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L’euchromatine présente des lysines majoritairement méthylées.
L’euchromatine présente des lysines majoritairement méthylées.
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La méthylation des lysines permet soit une activation, soit une répression transcriptionnelle et cela dépend uniquement de la position de la lysine sur la chaîne.
La méthylation des lysines permet soit une activation, soit une répression transcriptionnelle et cela dépend uniquement de la position de la lysine sur la chaîne.
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L’hétérochromatine constitutive se forme via la tri-méthylation au niveau de la lysine 9 de l’histone H3.
L’hétérochromatine constitutive se forme via la tri-méthylation au niveau de la lysine 9 de l’histone H3.
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Les ARNt et les ARNr sont des ARN non codant.
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Lors de la formation de la liaison peptidique un pyrophosphate est libéré.
Lors de la formation de la liaison peptidique un pyrophosphate est libéré.
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Lors du déplacement de la bulle transcriptionnelle, il y a ré-appariement des deux brins d’ADN en aval.
Lors du déplacement de la bulle transcriptionnelle, il y a ré-appariement des deux brins d’ADN en aval.
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Le brin d’ARN nouvellement synthétisé reste associé à l’ADN par un faible de nombre de bases.
Le brin d’ARN nouvellement synthétisé reste associé à l’ADN par un faible de nombre de bases.
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Les ADN polymérases permettent une synthèse d’ADN.
Les ADN polymérases permettent une synthèse d’ADN.
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L’ARN polymérase ne se dissocie qu’à la fin de la synthèse de l’ARN.
L’ARN polymérase ne se dissocie qu’à la fin de la synthèse de l’ARN.
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L’ARN polymérase mitochondriale est composée d’une seule chaîne polypeptidique.
L’ARN polymérase mitochondriale est composée d’une seule chaîne polypeptidique.
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L’ARN polymérase III est responsable de la synthèse des micro-RNA.
L’ARN polymérase III est responsable de la synthèse des micro-RNA.
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Les gènes de classe I sont transcrits dans le nucléole.
Les gènes de classe I sont transcrits dans le nucléole.
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Les gènes de classe III représentent environ 15% des ARN totaux cellulaires.
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Les gènes de classe II représentent le plus grand nombre de gènes et la plus grande activité transcriptionnelle.
Les gènes de classe II représentent le plus grand nombre de gènes et la plus grande activité transcriptionnelle.
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Les ARNr sont produits par transcription d’un gène de classe II sous la forme d’un précurseur 45S.
Les ARNr sont produits par transcription d’un gène de classe II sous la forme d’un précurseur 45S.
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Le site donneur d’épissage de séquence 5’GU3’ dans l’ARN se situe à l’extrémité 5’ des introns.
Le site donneur d’épissage de séquence 5’GU3’ dans l’ARN se situe à l’extrémité 5’ des introns.
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Le site de branchement est situé en aval de l’exon 1 à une distance d’environ 20 nucléotides.
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La snRNP U2 est recrutée au niveau du site de branchement.
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Le mécanisme d’épissage peut être couplé au mécanisme de transcription.
Le mécanisme d’épissage peut être couplé au mécanisme de transcription.
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