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Questions and Answers
Quelle lignée cellulaire est associée au gigantisme cellulaire et aux ponctuations basophiles?
Quelle lignée cellulaire est associée au gigantisme cellulaire et aux ponctuations basophiles?
Quel problème peut être observé lors de la lecture des frottis médullaires sous fort grossissement GX100?
Quel problème peut être observé lors de la lecture des frottis médullaires sous fort grossissement GX100?
Quel est l'objectif principal de l'archivage des myélogrammes?
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Quel signe morphologique peut indiquer une lignée granulocytaire lors de l'analyse?
Quel signe morphologique peut indiquer une lignée granulocytaire lors de l'analyse?
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Quelle affirmation est correcte concernant le myélogramme?
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Quel est le temps minimum recommandé pour appliquer un patch EMLA avant le geste de ponction ?
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Quelle est la première étape à réaliser avant la ponction ?
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Que doit-on faire après avoir retiré le mandrin du trocart ?
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Quelle est la méthode recommandée pour réaliser un frottis médullaire ?
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Quel type d'information doit être incluse dans la fiche de renseignements pour le laboratoire ?
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Quel est le but de réaliser plusieurs étalements médullaires sur lames ?
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Que doit-on faire avec les frottis avant de les envoyer au laboratoire ?
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Quel accompagnement est nécessaire lors de l'envoi des lames au laboratoire ?
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Quel est l'objectif principal du myélogramme ?
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Quels sont les sites de ponction couramment utilisés pour un myélogramme ?
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Quel est un exemple de contre-indication au myélogramme ?
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Quelle technique de coloration est utilisée après le prélèvement de moelle osseuse ?
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Quel type d'anesthésie locale est utilisé pour la ponction dans un myélogramme ?
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Lors du myélogramme, quelle condition pourrait justifier une prise en charge urgente ?
Lors du myélogramme, quelle condition pourrait justifier une prise en charge urgente ?
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Quelle est une complication potentielle du myélogramme liée à l'hémostase ?
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Quelle est la durée d'action de la xylocaïne après injection ?
Quelle est la durée d'action de la xylocaïne après injection ?
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Study Notes
Introduction au Myélogramme
- Le myélogramme est une procédure médicale diagnostique.
- Elle permet une étude cytologique quantitative et qualitative du tissu hématopoïétique.
- La moelle osseuse est prélevée par ponction.
- Le prélèvement se fait généralement au niveau de la crête iliaque ou du sternum.
- La moelle osseuse est examinée au microscope après coloration.
- La technique de coloration utilisée est la technique de May-Grünwald Giemsa.
Indications du Myélogramme
- Le myélogramme est principalement utilisé en hématologie, oncologie et pédiatrie.
- Il sert à diagnostiquer et suivre les troubles hématologiques.
- Il aide à diagnostiquer les cancers du sang.
- Il est utilisé pour surveiller les maladies hématologiques.
- Il sert à préparer les greffes de cellules souches.
- Il permet d'explorer les anomalies sanguines inexpliquées.
Indications Urgentes du Myélogramme
- Suspicion ou suivi/rechutes de leucémie aiguë.
- Suspicion de lymphome de haut grade (lymphome de Burkitt).
- Suspicion de syndrome d'activation macrophagique.
- Cytopénie sévère (thrombopénie inexpliquée, agranulocytose, pancytopénie).
Contre-Indications du Myélogramme
- Antécédents de sternotomie pour ponction sternale.
- Radiothérapie (en fonction du site irradié).
- Infection cutanée au niveau du site de prélèvement.
- Troubles importants de l'hémostase (hémophiles, déficit sévère en facteur de coagulation < 10 UI/dl).
- Allergies aux produits utilisés (notamment les produits iodés).
Phase Pré-Analytique - Réalisation de la Ponction
- Anesthésie Locale: Deux options sont possibles: injection de xylocaïne ou patch EMLA.
- Prévenir le patient de la sensation de picotements lors de l'injection de xylocaïne.
- Ne pas dépasser 5 mL de produit de xylocaïne.
- Patch EMLA à appliquer au moins 30 minutes avant la ponction (idéalement 45 minutes).
- Vérifier la mobilité du mandrin du trocart et l'adapter à la corpulence du patient.
- Décontamination de la zone de prélèvement.
- Traverser les tissus mous pour atteindre le plan osseux.
- Exercer une pression perpendiculaire maîtrisée sur l’os.
- S'arrêter entre les 2 tables de l'os.
- En site iliaque, arrêter quand le trocart est bien fiché dans l'os.
- Retirer le mandrin.
- Adapter une seringue stérile de 10 ml, préalablement purgée.
Phase Pré-Analytique - Préparation des Frottis
- Aspirer brièvement et retirer la seringue pour un examen purement morphologique.
- Faire 6 à 8 étalements médullaires sur lames.
- Sécher les frottis à l'air.
- Identifier chaque frottis au lit du malade.
- Emballer les frottis pour livraison au laboratoire.
- Les frottis doivent être placés sur un plan horizontal.
- Les lames ne doivent pas être fixées ni colorées avant l'envoi.
Examen Microscopique - L'Exemple de frottis médullaire.
- Un frottis de bonne qualité n’atteint pas l’extrémité de la lame.
- Les prélèvements bien étalés possèdent des franges en bout.
Examen Microscopique - Etallements Défectueux
- Trop de moelle sur la lame, pas assez étalée
- Pas assez de moelle, pas de frange, pas de grains adipeux
- Frottis irréguliers, sanglants et hémolyse centrale
- Répartition hétérogène, absence de frange
- Quantité trop importante de matériel, absence totale de frange.
Conditions d'Envoi au Laboratoire
- Les lames doivent être accompagnées d'une fiche de renseignements complète.
- Cette fiche doit inclure l'âge, l'historique médical, le traitement et l'historique du patient.
- Un prélèvement sanguin EDTA doit être inclus avec la demande de myélogramme.
Au Laboratoire - Coloration au May-Grünwald Giemsa
- Fixation du frottis.
- Coloration May- Grünwald.
- Laisser agir les colorants pendant des périodes précises.
- Coloration Giemsa.
- Attendre au moins 5 minutes avant l’observation microscopique du frottis.
Lecture du Myélogramme
- Faible grossissement (x 10): Apprécier la richesse médullaire et la présence de mégacaryocytes
- Juger de l'aspect homogène/non homogène des cellules des frottis
-
Fort grossissement (x 100): avec immersion :
- Identifier les différentes stades de maturation de la lignée mégacaryocytaire.
- Déterminer les cellules de la lignée érythroblastique.
- Identifier les cellules de la lignée granulaire.
- Identifier le reste du tissu hématopoiétique.
Etude Quantitative
- Calculer le nombre de cellules médullaires.
- Décompter au moins 500 cellules.
- Vérifier les valeurs de référence (adulte) pour les lignées telles que les granulocytes, érythroblastes et autres cellules.
- Rechercher les anomalies quantitatives (érythroblastose, myéloprolifératifs, etc.).
- Utiliser les contre-indications.
Résultats et Compte Rendu
- Évaluation de la richesse médullaire.
- Décompte des différentes lignées cellulaires (granulocytes, érythroblastes, etc.).
- Commentaire qualitatif concernant les cellules.
- Conclusion sur les anomalies observées.
Archivage
- Enregistrer les résultats dans le registre d'archivage.
- Agrémenter les frottis non colorées et le frottis sanguin.
- Mettre le diagnostic et l'étiquette du patient sur la feuille d'archivage.
Conclusion Générale
- Le myélogramme est un outil de diagnostic précieux à condition de bien maîtriser les étapes de prélèvement à lecture.
- La reconnaissance des anomalies quantitatives et qualitatives est essentielle.
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Description
Ce quiz explore le myélogramme, une procédure clé en hématologie qui permet d'étudier la moelle osseuse. Vous apprendrez ses indications, son utilisation dans le diagnostic des maladies hématologiques, ainsi que son rôle dans la surveillance des cancers du sang. Testez vos connaissances sur cette technique diagnostique essentielle!