Muestras de Sangre Venosa

Muestras de Sangre Venosa

• Se obtiene por punción venosa (flebotomía).
• La muestra necesaria depende del estudio: sangre total, plasma o suero.

Sangre Total

• Se recolecta en tubos con anticoagulante (EDTA, principalmente).
• Usos: estudios hematológicos (cualitativos y cuantitativos), grupo sanguíneo y estudios bioquímicos/genéticos.

Plasma

• Se obtiene de la sangre total con anticoagulante.
• Se deja reposar 10 minutos a temperatura ambiente.
• Se centrifuga para separar el plasma (sobrenadante).
• Usos: estudios de coagulación.

Suero

• Se obtiene de la sangre total SIN anticoagulante.
• Se deja reposar 10 minutos para la formación del coágulo.
• Se centrifuga para separar el suero (sobrenadante).
• Usos: serología y estudios bioquímicos.

Preparación del Paciente

• Posición cómoda en silla, con el antebrazo apoyado y brazo extendido.
• Se registra si la extracción se realiza con el paciente acostado.
• En posición tumbada, las macromoléculas en el plasma aumentan entre un 5-15%.

Métodos de Extracción

Sistema de Vacío

• La sangre fluye directamente de la vena al tubo.
• El sistema usa un adaptador con aguja y tubo de vacío.
• La aguja tiene una válvula que bloquea el flujo entre los tubos.
• Los tubos se llenan secuencialmente en el orden establecido.

Sistema de Vacío + Palomilla/Aguja y Jeringa

• Se usa para venas finas o frágiles.
• La jeringa permite una extracción más controlada y precisa.
• Se debe evitar tirar del émbolo con demasiada fuerza.

Preparación del Material

• Guantes (no estériles), compresor, desinfectante (alcohol, clorhexidina), algodón, gasas, esparadrapo, tubos, sistema de vacío, y contenedor para residuos cortopunzantes.

Tubos para la Extracción

• Los tubos con aditivos llevan la cantidad correcta para el volumen sanguíneo.
• Se utiliza el código de colores ISO 6710 para identificarlos.

Frascos para Hemocultivo

• Usados en microbiología.
• Contienen medio de cultivo.
• Se inoculan 5-10 ml de sangre en los frascos.
• Tipos: aerobios (tapón azul), anaerobios (tapón rojo), y pediátrico único (tapón amarillo, 1-4 ml de sangre).

Identificación de los Tubos

• El Sistema Informático de Laboratorio (SIL) genera las etiquetas.
• Incluyen la fecha y hora de la extracción.
• Se colocan en una gradilla según el orden de llenado.

Orden de Llenado de los Tubos

1. Frascos de hemocultivo.
2. Tubo seco.
3. Tubos para coagulación (con citrato).
4. Tubos para VSG (con citrato).
5. Tubos para hemograma (EDTA).
6. Tubos con otros aditivos.

Zona de Extracción

• En adultos, venas del brazo (cubital media, cefálica, basílica).
• Otras zonas: muñeca, dorso de la mano, antebrazo.
• Evitar cicatrices, hematomas, y zonas con mastectomías o terapia intravenosa (utilizar el otro brazo).
• Pacientes especiales (niños, obesos, oncológicos o con problemas cardíacos): se les puede pedir cerrar el puño, dar masajes, aplicar calor o dejar el brazo colgando.

Procedimiento de Extracción con Sistema de Vacío

1. Aplicar compresor (7,5-10 cm por encima del punto de extracción) para 2 minutos máximo.
2. Limpiar la zona de punción con gasas con desinfectante.
3. Colocar la aguja en el tubo.
4. Realizar la punción (bisel hacia arriba).
5. Llenar los tubos en el orden establecido, hasta que se detenga el flujo en cada uno.

• Agitar suavemente con anticoagulante y NO agitar sin anticoagulante.

6. Retirar el compresor.
7. Retirar la aguja y aplicar presión con una compresa (10-15 minutos).
8. Depositar la aguja en el contenedor para residuos cortopunzantes.

Manejo de Muestras

• Separar las fases en muestras que lo requieran (plasma/suero) si no se llevan al laboratorio inmediatamente.
• Centrifugar y almacenar en tubos Eppendorf etiquetados (se pueden congelar).
• Los tubos con gel separador mantienen las fases separadas durante el transporte.

Hemólisis

• Rotura de eritrocitos.
• Causas: aguja demasiado fina, hematoma, goteo en el tubo, llenado incorrecto y mezcla enérgica con anticoagulante.

Muestras para Hemocultivo

• Se necesitan 2 muestras (aerobios y anaerobios).
• Se toman precauciones para evitar contaminación (guantes estériles, desinfección).
• Proporción sangre/medio de cultivo: 1:10.
• Cantidades: adultos (15-20 ml), niños (1-3 ml).
• Varias muestras posibles (intervalo entre extracciones aproximado de 3 horas, acortando en caso de urgencia).
• Conservar a 35-37 °C (o temperatura ambiente, sin refrigeración ni congelación).