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Questions and Answers
Was ist das Hauptprinzip der Polony-Sequenzierung?
Was ist das Hauptprinzip der Polony-Sequenzierung?
Wofür werden Phylochips hauptsächlich verwendet?
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Wie wird bei der Pyrosequenzierung sichergestellt, dass Enzyme nicht aus den Filterkammern geschwemmt werden?
Wie wird bei der Pyrosequenzierung sichergestellt, dass Enzyme nicht aus den Filterkammern geschwemmt werden?
Welche Rolle spielen die speziellen Filter in den Nano-Liter-Filterkammern?
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Was ermöglicht die Hybridisierung der DNA-Proben auf Phylochips?
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Wie tragen Pufferlösungen zur Stabilisierung der Enzyme in den Filterkammern bei?
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Welches Ziel hat die PCR in der Polony-Sequenzierung?
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Was ist eine der Vorteile der Polony-Sequenzierung?
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Was beschreibt das Prinzip der cDNA-Hybridisierung auf einem Micro Array?
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Welches der folgenden Sequenzierungsverfahren gilt als Einzelstrang-Sequenzierung?
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Welcher Aspekt ist bei der cDNA-Hybridisierung auf einem Micro Array entscheidend für die Analyse der Genexpression?
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Was ist ein Vorteil der Polony-Sequenzierung?
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Welche Eigenschaft hat die Einzelmolekül-Sequenzierung?
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Was geschieht im Schritt der Endreparatur in der Polony-Sequenzierung?
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Was geschieht während der Amplifikation in der Polony-Sequenzierung?
Was geschieht während der Amplifikation in der Polony-Sequenzierung?
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Welche der folgenden Aussagen über die Einzelmolekül-Real-Time-Sequenzierung (SMRT) ist korrekt?
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Was ist der Hauptvorteil der Hot-Start-PCR?
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Welche Eigenschaften haben TaqMan-Sonden?
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Warum sind SYBR Green-Sonden anfälliger für falsch positive Ergebnisse?
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Was beschreibt DNA-Microarrays?
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Wie funktioniert die Hydrolyse-Sonde bei der Taq-PCR?
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Welches Argument unterstützt die Verwendung von hochwertiger DNA-Reinigung vor der PCR?
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Welche Funktion hat die Quencher-Marke in TaqMan-Sonden?
Welche Funktion hat die Quencher-Marke in TaqMan-Sonden?
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Was ist ein Nachteil von SYBR Green-Sonden im Vergleich zu TaqMan-Sonden?
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Was beschreibt die Next-Generation-Sequenzierung (NGS)?
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Welches der folgenden Merkmale charakterisiert die Sanger-Sequenzierung?
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Welche Aussage über die Schmelzpunktanalyse bei qPCR ist korrekt?
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Was sind dideoxynukleotide in der Sanger-Sequenzierung?
Was sind dideoxynukleotide in der Sanger-Sequenzierung?
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Eines der folgenden Merkmale zeigt, dass die Amplifikation bei der qPCR erfolgreich war.
Eines der folgenden Merkmale zeigt, dass die Amplifikation bei der qPCR erfolgreich war.
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Was ist ein Vorteil der Nested PCR?
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In welchem Fall ist eine Multiplex-PCR vorteilhaft?
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Wie beeinflusst der Schmelzpunkt die Analyse in der qPCR?
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Was beschreibt der Schmelzpunkt (Tm) bei der Schmelzpunktanalyse?
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Welcher Faktor hat keinen Einfluss auf die Schmelztemperatur (Tm)?
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Wie wird die Schmelzpunktanalyse hauptsächlich durchgeführt?
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Welcher dieser Zwecke ist NICHT mit der Schmelzpunktanalyse verbunden?
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Welche Technik nutzt die Schmelzpunktanalyse häufig als zusätzlichen Schritt?
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Was geschieht während der Schmelzpunktanalyse mit den Nukleinsäuren bei steigender Temperatur?
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Welche Aussage über die Schmelzkurvenanalyse ist korrekt?
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Welche der folgenden Aussagen ist über die Anwendung der Schmelzpunktanalyse korrekt?
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Study Notes
Polony-Sequenzierung
- Die DNA-Moleküle werden in winzige DNA-"Polonies" immobilisiert, die durch PCR (Polymerasekettenreaktion) erzeugt werden.
- Jede Polonie repräsentiert eine einzelne DNA-Vorlage und wird dann mit Fluoreszenzmarkern markiert und sequenziert.
- Durch die Wiederholung dieses Prozesses für viele Polonies können große Mengen von DNA parallel sequenziert werden, was zu schnellen und kostengünstigen Sequenzierungsergebnissen führt.
Phylochips
- Phylochips sind mikroarraybasierte Technologien, die die genetische Vielfalt und Evolution von Organismen untersuchen.
- Sie beinhalten spezifische DNA-Sonden, die auf bestimmte genetische Marker abzielen, die für verschiedene Arten charakteristisch sind.
- Durch Hybridisierung der DNA-Proben eines Organismus mit den Sonden auf dem Phylochip können Forscher die genetische Zusammensetzung eines Organismus identifizieren und mit anderen Arten vergleichen.
- Phylochips werden häufig in der Phylogenie, der Erforschung von Stammbäumen und der Untersuchung der Evolution verwendet.
Pyrosequenzierung
- Um sicherzustellen, dass die arbeitenden Enzyme nicht aus den Nano-Liter-Filterkammern geschwemmt werden, werden verschiedene Methoden angewendet.
- Spezielle Filter in den Kammern halten die Enzyme zurück, während die Reaktionslösung ausgetauscht wird.
- Der Flüssigkeitsaustausch erfolgt kontrolliert und langsam, um eine übermäßige Strömung zu vermeiden.
- Pufferlösungen und Bindemittel stabilisieren Enzyme in den Filterkammern.
- Hot-Start-PCR blockiert die Aktivität der Polymerase bis zur optimalen Reaktionstemperatur und reduziert unspezifische Amplifikationen.
- Sorgfältige DNA-Reinigung reduziert Verunreinigungen und die Wahrscheinlichkeit falsch positiver Ergebnisse.
Sonden in der quantitativen PCR
- TaqMan-Sonden sind Oligonukleotid-Sonden, die mit einem fluoreszierenden Reporterfarbstoff und einem Quencher-Bereich markiert sind.
- Während der PCR bindet die Sonde an ihre komplementäre Sequenz innerhalb des Amplifikationsprodukts.
- Die Taq-Polymerase spaltet die Sonde während der Amplifikation, wodurch der Reporter vom Quencher getrennt wird und ein Fluoreszenzsignal entsteht.
- TaqMan-Sonden bieten eine hohe Spezifität und sind weniger anfällig für unspezifische Bindungen und Verunreinigungen als SYBR Green-Sonden.
- SYBR Green ist ein DNA-Farbstoff, der während der PCR an doppelsträngige DNA bindet und als interkalierender Farbstoff fungiert.
- Die Intensität des fluoreszierenden Signals nimmt mit zunehmender Anzahl der Amplifikationsprodukte zu.
- SYBR Green-Sonden sind anfälliger für unspezifische Bindungen und können zu falsch positiven Ergebnissen führen, wenn Verunreinigungen vorhanden sind.
DNA-Microarrays
- Oligonukleotide, cDNA oder Fragmente von PCR-Produkten werden auf Trägermaterial gedruckt und dienen als Sonden an definierten Positionen.
- mRNA wird vorher zu cDNA umgeschrieben und zum Beispiel fluoreszenzmarkiert.
- cDNA hybridisiert an komplementären Gegenpart auf der Micro-Array.
- Eine große Anzahl an Informationen wird auf kleinem Raum dargestellt.
- Position, Farbe und Intensität jedes Punktes geben Aufschluss über die Expressionsrate.
- Anwendungen: Pflanzen und transgene Pflanzen, Genexpressionsmuster (Verlauf einer Krankheit).
Alternative Sequenzierungsmethoden
- Einzelstrang-Sequenzierung: Diese Methode basiert auf der Sequenzierung einzelner Stränge von DNA oder RNA und ermöglicht die Sequenzierung von langen DNA- oder RNA-Molekülen.
- Einzelmolekül-Sequenzierung: Im Gegensatz zu traditionellen Methoden, bei denen eine Population von DNA-Molekülen sequenziert wird, ermöglicht die Einzelmolekül-Sequenzierung die Sequenzierung eines einzelnen DNA- oder RNA-Moleküls.
Prinzip des Polony-Sequencing (detaillierte Beschreibung)
- Mate Pair Library: genomische DNA von einem Organismus wird zu 1kb Fragmenten gesheared.
- End repair der Fragmente, Erzeugung von blunted ends ermöglicht blunt end Ligation mit Adaptoren.
- DNA mit ca. 1kb wird durch PAGE selektiert und die 1kbp Fragmente werden mit einem Linker (T30) zirkularisiert.
- Linker enthält 2 Recognition sites für Mme1(Type II RE), der ca. 30 bp entfernt von der recognition site schneidet.
- Resultat: ca. 70 bp große paired end Fragmente.
- Amplifikation der zirkularisierten DNA mittels Emulsions-PCR: An jedes Bead bindet jeweils 1 Sample Molekül und wird stark amplifiziert.
- Enrichment jener Beads an denen Amplifikation stattgefunden hat - Isolieren von Beads wo Amplifikation stattgefunden hat.
- Monolayer: Mischung der Beads mit Polyacrylamid.
- Die Intensität der Fluoreszenz hängt von der jeweiligen chemischen Umgebung ab.
- Bei Einbau ins Amplifikationspordukt kommt es zu einer Zunahme der Fluoreszenz.
Methoden zur Genomsequenzierung
- Next-Generation-Sequenzierung (NGS): Diese Methode ermöglicht schnelle und kostengünstige Sequenzierung großer Mengen an DNA.
- Sanger-Sequenzierung: Diese klassische Methode basiert auf der enzymatischen Synthese von DNA in vitro, bei der dideoxynukleotid-Terminatoren die DNA-Synthese anhalten.
Vorteile von Nested PCR
- Erhöhte Spezifität: Nested PCR verwendet zwei Sätze von Primern, wobei der zweite Satz innerhalb des Produkts des ersten Satzes liegt. Dies erhöht die Spezifität der Amplifikation und reduziert das Risiko unspezifischer Produkte.
- Verbesserte Sensitivität: Nested PCR erhöht die Sensitivität der Reaktion, da nur das gewünschte Amplifikat des ersten PCR-Zyklus mit den zweiten Primern hybridisiert und amplifiziert wird, was zu einer höheren Konzentration des Zielprodukts führt.
- Reduzierung von Kontamination: Nested PCR minimiert das Risiko von Kontamination, da die zweite PCR nur das Produkt der ersten PCR verwendet, wodurch das Vorhandensein anderer DNA-Moleküle in der Reaktion ausgeschlossen wird.
- Anwendungen: Nested PCR findet Anwendung bei der Untersuchung von seltenen Mutationen, in der forensischen Genetik, bei der Diagnose von Krankheiten, der Klonierung von DNA und der Untersuchung von Umweltsampel.
Multiplex PCR
- Multiplex PCR ermöglicht die gleichzeitige Amplifikation mehrerer DNA-Sequenzen in einer einzigen Reaktion.
- Ermöglicht die Untersuchung mehrerer Gene oder DNA-Regionen in einer einzigen Reaktion und spart Zeit und Ressourcen.
- Anwendungen: Diagnose verschiedener genetischer Erkrankungen, molekulare Diagnostik, Genotypisierung und Forensik.
Schmelzpunktanalyse
- Die Schmelzpunktanalyse wird eingesetzt, um die Spezifität von PCR-Produkten zu überprüfen und unspezifische Produkte zu identifizieren.
- Man verfolgt den Verlust der Fluoreszenz von SYBR Green während der langsamen Temperaturerhöhung.
- Eine einzelne Schmelzkurve zeigt ein spezifisches Amplifikationsprodukt, während mehrere Kurven auf mehrere Amplifikationsprodukte hindeuten.
- Die Schmelzpunktanalyse kann auch zur Bestimmung der Schmelztemperatur (Tm) von DNA- oder RNA-Fragmenten, zur Identifizierung von Nukleinsäuresequenzen und zur Mutationserkennung verwendet werden.
Shotgun-Sequenzierung
- Shotgun-Sequenzierung ist eine Methode, die auf dem Zufallsprinzip basiert.
- Das Genom wird in viele kleine Fragmente geschnitten.
- Diese Fragmente werden mit einer bekannten Methode (z.B. Sanger-Sequenzierung) sequenziert.
- Die resultierenden Sequenzdaten werden mit einem Computerprogramm zusammengesetzt.
- Vorteil: Shotgun-Sequenzierung ist schnell und kostengünstig.
- Nachteil: Die Methode ist fehleranfällig und es ist schwierig, große Genome mit langen, repetitiven Abschnitten zu sequenzieren.
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