Méthodes de culture cellulaire
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Questions and Answers

Quelle méthode est utilisée pour isoler les cellules organisées en tissu?

  • Méthodes d'électrophorèse
  • Méthodes de dissection (correct)
  • Méthodes de spectrométrie
  • Méthodes de culture
  • Le test de viabilité avec le bleu de Trypan est une méthode non vitale.

    False

    Quelle est la composition du tampon PBS utilisé pour la dilution des cellules?

    Phosphate Buffer Saline (pH 7,4)

    Les PBMC doivent être cultivées à _____ degrés Celsius avec 5% de CO2.

    <p>37</p> Signup and view all the answers

    Associez les éléments suivants avec leur utilisation adéquate:

    <p>Bleu de Trypan = Test de viabilité Ficoll = Séparation des cellules RPMI1640 = Milieu de culture Microplaques = Culture cellulaire en suspension</p> Signup and view all the answers

    Quelles cellules peuvent se diviser indéfiniment?

    <p>Cellules tumorales</p> Signup and view all the answers

    Les hybridomes résultent de la fusion de deux types de cellules lymphocytaires normales.

    <p>False</p> Signup and view all the answers

    Quel est un exemple de méthode d'obtention pour les cellules circulantes?

    <p>Centrifugation</p> Signup and view all the answers

    Les cellules libres incluent des ______ et des lymphocytes.

    <p>monocytes</p> Signup and view all the answers

    Associez les termes suivants avec leur description:

    <p>Souche cellulaire = Dérivée d’une primoculture par sélection Clone cellulaire = Population dérivant d’une seule cellule Hybridome = Fusion de plasmocytes et lymphocytes B Culture cellulaire = Lignée pérennisée pour des manipulations</p> Signup and view all the answers

    Quels sont des exemples de cellules adhérentes?

    <p>Macrophages</p> Signup and view all the answers

    Les cellules en cohésion forment des structures organisées en tissu.

    <p>True</p> Signup and view all the answers

    Qu'est-ce que la hétéroploïdie?

    <p>Un nombre anormal de chromosomes</p> Signup and view all the answers

    Quelle est la principale caractéristique d'une lignée cellulaire?

    <p>Elle a une capacité illimitée de se diviser.</p> Signup and view all the answers

    Les cellules des primocultures peuvent se diviser indéfiniment.

    <p>False</p> Signup and view all the answers

    Quelles sont les étapes pour tester une molécule thérapeutique?

    <p>Etude in vitro, étude in vivo, essais cliniques, validation par la FDA.</p> Signup and view all the answers

    La __________ est une culture dérivant des cellules prélevées directement à partir d’un organisme vivant.

    <p>primoculture</p> Signup and view all the answers

    Quel est un exemple de biomolécule produite dans le cadre des biotechnologies?

    <p>Insuline</p> Signup and view all the answers

    Associez chaque type d'étude avec sa description appropriée:

    <p>in vitro = Étude réalisée sur des cellules en culture in vivo = Étude réalisée sur des organismes vivants ex vivo = Étude réalisée sur des cellules prélevées d'un organisme essaie clinique = Étude réalisée sur des humains pour tester des traitements</p> Signup and view all the answers

    Le repiquage consiste à transférer des cellules d'un flacon de culture à un autre.

    <p>True</p> Signup and view all the answers

    Les essais cliniques comprennent plusieurs __________ pour tester les traitements sur les humains.

    <p>phases</p> Signup and view all the answers

    Quel est le principal but de la culture cellulaire ?

    <p>Faire croître des cellules en dehors de leur organisme</p> Signup and view all the answers

    La culture cellulaire est limitée à l'étude des cellules animales uniquement.

    <p>False</p> Signup and view all the answers

    Quels sont les trois types de cultures cellulaires mentionnés ?

    <p>Culture d'organes, culture de tissus, culture cellulaire</p> Signup and view all the answers

    La culture cellulaire est un outil majeur dans les sciences de la ______.

    <p>vie</p> Signup and view all the answers

    Quel avantage offre la culture cellulaire par rapport aux études sur des organismes entiers ?

    <p>Elle offre un système d'étude plus simple et contrôlé</p> Signup and view all the answers

    Les cellules en culture ne peuvent pas se diviser.

    <p>False</p> Signup and view all the answers

    La culture de tissues permet la conservation des fonctions ______ de chaque tissu.

    <p>spécifiques</p> Signup and view all the answers

    Associez les types de culture avec leur description :

    <p>Culture d'organes = Maintien de l'organisme d'organes ayant conservé leur structure et fonction Culture de tissus = Maintien de l'organisme de tissus de manière spécifique Culture cellulaire = Maintien de cellules non organisées en tissu Culture ex-vivo = Technique d'expérimentation en dehors de l'organisme</p> Signup and view all the answers

    Quel est l'objectif principal des méthodes de culture?

    <p>Maintenir les cellules en suspension</p> Signup and view all the answers

    Les hottes à flux laminaires ne devraient pas être utilisées pour des manipulations stériles.

    <p>False</p> Signup and view all the answers

    Quelles étapes composent le processus d'adhésion des cellules au support?

    <ol> <li>Adsorption, 2. Contact, 3. Attachement, 4. Étalement</li> </ol> Signup and view all the answers

    Le pH acide est représenté par la couleur ______ dans le milieu de culture.

    <p>jaune</p> Signup and view all the answers

    Associez les matériaux utilisés pour les supports de culture avec leur traitement:

    <p>Verre = Utilisé dans le passé Plastiques = Remplacent le verre Collagène = Traitement des plastiques Protéoglycanes = Amélioration de l'adhérence</p> Signup and view all the answers

    À quelle fréquence doit-on changer le milieu de culture?

    <p>Chaque 2 à 3 jours</p> Signup and view all the answers

    Les cellules organisées en tissus ne s'adhèrent pas au support dans un environnement de culture approprié.

    <p>False</p> Signup and view all the answers

    Quel indicateur de pH est utilisé dans le milieu de culture?

    <p>Rouge de phénol</p> Signup and view all the answers

    Quel facteur de croissance a été mis en évidence pour la première fois par S Cohen en 1959?

    <p>EGF</p> Signup and view all the answers

    L'IGF (Insuline Like Growth Factor) possède une activité mitogène sur les fibroblastes.

    <p>True</p> Signup and view all the answers

    Quels types de cellules portent le récepteur du PDGF?

    <p>Les cellules mésenchymateuses et les cellules vasculaires du muscle lisse.</p> Signup and view all the answers

    Le facteur de croissance ________ est connu pour augmenter la survie et la différenciation des cellules gliales sensorielles.

    <p>NGF</p> Signup and view all the answers

    Associez chaque facteur de croissance avec son effet principal :

    <p>EGF = Mitogène pour les cellules épidermiques IGF = Activité similaire à l'insuline NGF = Augmente la survie des cellules gliales FGF = Activité mitogène sur plusieurs tissus</p> Signup and view all the answers

    Le FGF a une activité mitogène sur des cellules du cerveau et de l'hypothalamus.

    <p>True</p> Signup and view all the answers

    Quel facteur de croissance est isolé à partir de plaquettes?

    <p>PDGF</p> Signup and view all the answers

    Quel pourcentage d'identité de séquence existe-t-il entre IGF1 et IGF2?

    <p>70%</p> Signup and view all the answers

    Study Notes

    Culture cellulaire et applications biotechnologiques - Cours L3

    • La culture cellulaire est un ensemble de techniques permettant de faire croître des cellules en dehors de leur organisme (ex vivo) ou de leur milieu d'origine, dans un but d'expérimentation scientifique.
    • La culture des cellules animales fournit un système expérimental plus simple qu'un animal entier et permet d'étudier des conditions soigneusement contrôlées.
    • La culture cellulaire est un outil majeur dans les sciences de la vie.
    • La culture de cellules animales fait partie d'une technologie élargie nommée «La culture de tissu», qui elle-même est constituée de 3 parties essentielles:
      • Culture d'organes: Maintien d'organes en dehors de l'organisme, conservant leur structure et fonction.
      • Culture de tissus: Maintien de tissus en dehors de l'organisme, conservant les fonctions spécifiques de chaque tissu.
      • Culture cellulaire: Maintien de cellules non organisées en tissu, capables de se diviser et d'exprimer in vitro leurs métabolismes et fonctions spécifiques.
    • Les applications de la culture cellulaire incluent:
      • Biologie cellulaire: Étude de la différenciation, du vieillissement cellulaire, de l'inflammation et des mécanismes du cancer.
      • Santé: Diagnostic de maladies, test de molécules thérapeutiques pharmacologiquement actives sur des cellules.
      • Biotechnologie: Production de biomolécules à usage thérapeutique (ex: insuline, interférons, cytokines, anticorps monoclonaux, vaccins).
    • La méthode de culture cellulaire inclut les étapes suivantes:
      • Étude in vitro/ex vivo/in vivo.
      • Étude in vivo (avec des modèles animaux).
      • Essais cliniques (plusieurs phases).
      • Validation par la FDA et commercialisation.
      • Production des biomolécules.

    Définitions clés:

    • Primoculture (culture primaire): Culture dérivée de cellules prélevées directement d'un organisme vivant, sans modification génétique. Les cellules ne sont pas immortelles et dégénèrent après un certain nombre de générations.
    • Repiquage/Passage: Transfert de cellules d'un flacon de culture à un ou plusieurs autres flacons. Les cellules mises en culture après le premier repiquage forment une culture secondaire.
    • Lignée cellulaire: Groupe de cellules stables issues d'une seule cellule et qui se divisent indéfiniment. Elles peuvent être cancéreuses (ex: HeLa) ou rendus cancéreuses par une mutation génétique.
    • Souche cellulaire: Dérivée d'une primoculture ou d'une lignée cellulaire, sélection ou clonage de cellules ayant des propriétés ou marqueurs spécifiques.
    • Clone cellulaire: Population de cellules issue d'une seule cellule par division cellulaire.
    • Hybridome: Cellule résultant de la fusion in vitro d'une lignée maligne de plasmocytes et de lymphocytes B provenant d'un animal préalablement immunisé.

    Obtention des cellules:

    • Deux types de cellules sont distingués:
      • Cellules libres (circulantes) (ex: PBMC, monocytes, lymphocytes).
      • Cellules en cohésion/adhérentes (organisées en tissus) (ex: cellules dendritiques, macrophages, hépatocytes, cellules épithéliales).
    • Les méthodes d'obtention diffèrent en fonction du type cellulaire.
      • Pour les cellules circulantes, prélèvement, centrifugation et gradient de densité (Ficoll).
      • Pour les cellules organisées en tissus, dissection ou méthodes enzymatiques (ex: trypsine).

    Méthodes d'obtention des cellules circulantes:

    • Prélèvement sanguin/anticoagulant.
    • Décantation (+4°C).
    • Récupérer le plasma.
    • Dilution du culot
    • Tampon PBS(Phosphate Buffer Saline) pH 7,4.
    • Verser délicatement le sang dilué sur le Ficoll d=1,077
    • Centrifugation
    • Prélever l'anneau de PBMC et procéder à un lavage par PBS-NHCl/4 puis centrifugation.
    • Obtenir le culot cellulaire dans un volume minimum de RPMI-1640.

    Méthodes de culture en suspension:

    • Mettre les cellules (ex: PBMC) en culture en suspension dans un milieu de culture comme le RPMI-1640 à 37°C, 5% de CO2 et 100% d'humidité.
    • Utiliser des incubateurs à CO2.

    Culture des cellules adhérentes:

    • L'adhérence à un support doit être évitée dans ce type de culture.
    • Les cellules non spécifiques adhèrent sur un support qui n'est pas traité avec des molécules d'adhésion.
    • Après l'incubation à 37°C, les lavages au PBS éliminent les cellules non adhérentes.
    • Les monocytes adhèrent au support.
    • Procédure de trypsination (enzyme: Trypsine) est nécessaire pour séparer les monocytes avec un support traité avant de les remettre en suspension dans un milieu de culture.

    Test de viabilité cellulaire :

    • Bleu de trypsine: Colorant vital utilisé pour distinguer les cellules vivantes (blanches au microscope) des cellules mortes (bleues).
    • Test MTT: Méthode pour évaluer la viabilité cellulaire en mesurant la capacité des cellules à réduire le MTT en un produit coloré.

    Méthodes de co-cultures:

    • Étudie les interactions entre deux types distincts de cellules.
    • Exemple: cellules dendritiques tolérogènes et lymphocytes T CD8+.

    Types de culture cellulaire

    • In vitro: Cultures en laboratoire (ex: lignées cellulaires).
    • Ex vivo: Cultures de cellules prélevées d'un organisme vivant.
    • In situ: Cultures d'explants (fragments de tissus).
    • In vivo-like: Cultures 3D qui imitent l'environnement tissulaire in vivo.

    Culture cellulaire 3D:

    • Les cellules normales vivent dans un environnement à 3 dimensions.
    • Les cultures 3D produisent une biologie cellulaire plus réaliste.

    Systèmes microfluidiques (Organ-on-chip):

    • Combinaison de la culture 3D et de la technologie microfluidique.
    • Permet d'évaluer l'efficacité d'une thérapie cellulaire. (ex: thérapie cellulaire adoptive T cells/cancer).

    Milieu de culture :

    • Un milieu de culture couvre les besoins des cellules, reproduisant fidèlement l'environnement in vivo.
      • Vecteur d'éléments nutritifs.
      • Maintien des constantes physicochimiques (pH et osmolarité).
    • Types de milieux synthétiques:
      • Empirique (classique): Composé de sels minéraux, métaux, glucose, acides aminés, vitamines et indicateurs de pH.
      • Définis: Composé des mêmes éléments que le milieu empirique, mais avec des quantités quantifiées précisément.

    Additifs:

    • Sérum: Contient des facteurs nécessaires à la division et la différenciation des cellules (hormones, facteurs de croissance, molécules d'adhésion, protéines de transport). Le pourcentage de sérum varie selon le type cellulaire.
    • Antibiotiques: Inhibent la croissance des contaminants bactériens et fongiques.
    • Facteurs de croissance: Molécules polypeptidiques qui régulent la prolifération, la différenciation et la survie des cellules eucaryotes.

    Contrôle fonctionnel et contamination:

    • Contrôle fonctionnel de la culture cellulaire: Préserver les fonctions spécifiques des cellules tout en maintenant leur prolifération.
    • Critères: Conditions d'asepsie, test de viabilité, morphologie cellulaire au microscope à phase inversée, ultrastructure au microscope électronique.
    • Contrôle de routine: Effectué pendant la culture, il porte sur le changement de milieu pour maintenir des conditions optimales (pH).
    • Contaminations: Les agents biologiques ou chimiques peuvent altérer les caractéristiques cellulaires, il faut donc surveiller les contaminations possibles.
    • Mycoplasmes: Contaminants bactériens très difficiles à détecter.
    • Détection des mycoplasmes via des tests de coloration (ex: DAPI).

    Conservation des cellules:

    • Intérêts: Constituer une réserve, protéger des modifications génétiques, du vieillissement et contamination.
    • Techniques:
      • Cryoconservation: Conservation à basses températures (-180 °C à -196 °C). Utilise de l'azote liquide.
      • Cryoprotecteurs: Substances qui préservent les cellules des dommages lors de la congélation et décongélation (ex: DMSO, glycérol).
      • Matériel: Ampoules et cryotubes.
      • Méthode de congélation progressive et décongélation rapide.

    Incidences d'une mauvaise congélation/décongélation:

    • Formation de cristaux de glace.
    • Variation de la pression osmotique.
    • Diminution du rendement cellulaire.

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    Testez vos connaissances sur les méthodes utilisées pour isoler et cultiver les cellules organisées en tissu. Ce quiz couvre les principes de base des techniques de culture cellulaire, du test de viabilité à l'utilisation de PBS. Parfait pour les étudiants en biologie cellulaire ou en biotechnologie.

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