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Questions and Answers
Pourquoi est-il important de numéroter, titrer et légender les éléments graphiques?
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Quel type d'éléments graphiques est mentionné dans le contenu?
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Quel est un des objectifs principaux d'utiliser des éléments graphiques dans un document?
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Parmi les éléments suivants, lequel n'est pas mentionné comme un élément graphique?
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Quel est l'impact d'utiliser des éléments graphiques sans légende?
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Quel est le volume d'anticorps secondaire à distribuer dans chaque puits ?
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Quelle est la durée d'incubation de la plaque ?
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Quel critère est essentiel dans le choix d'un radio-isotope pour une application en biologie médicale?
Quel critère est essentiel dans le choix d'un radio-isotope pour une application en biologie médicale?
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À quelle température doit avoir lieu l'incubation de la plaque ?
À quelle température doit avoir lieu l'incubation de la plaque ?
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Pourquoi la stabilité des molécules marquées est-elle importante lors du choix d'un radio-isotope?
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Quel est un des principaux avantages d'un radio-isotope avec une période suffisamment longue?
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Quel matériau est utilisé pour recouvrir la plaque pendant l'incubation ?
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Quel aspect rend la détection du rayonnement émis par un radio-isotope essentielle?
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Quel serait un exemple de condition inappropriée pour l'incubation de la plaque ?
Quel serait un exemple de condition inappropriée pour l'incubation de la plaque ?
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Parmi les caractéristiques souhaitables, laquelle ne doit pas être associée à un bon radio-isotope?
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Quel est le taux normal de CRP dans le sérum ?
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Quel facteur peut influencer le taux de CRP en l'absence d'un syndrome inflammatoire ?
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La CRP est principalement utilisée comme indicateur de quel type de condition ?
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Que signifie un taux de CRP supérieur à 6 mg/l ?
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Quelle est l'importance de la CRP dans le diagnostic médical ?
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Quel phénomène décrit l'agglutination immunologique ?
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Quel est le résultat visible d'une agglutination immunologique ?
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Quel type de solution est impliqué dans l'agglutination immunologique ?
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Comment est définie l'agglutination immunologique ?
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Quel est le rôle principal des anticorps dans l'agglutination immunologique ?
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Quel est le rôle du substrat de Tétraméthylbenzidine (TMB) dans la visualisation du complexe immun ?
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Si le produit de la réaction avec le TMB n'est pas bleu, que pouvons-nous en conclure ?
Si le produit de la réaction avec le TMB n'est pas bleu, que pouvons-nous en conclure ?
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Pourquoi la couleur bleue est-elle utilisée pour indiquer la présence du complexe immun ?
Pourquoi la couleur bleue est-elle utilisée pour indiquer la présence du complexe immun ?
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Laquelle des affirmations suivantes est FAUSSE concernant le complexe immun conjugué ?
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En quoi la visualisation du complexe immun conjugué est-elle importante ?
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Flashcards
Éléments graphiques
Éléments graphiques
Supports visuels comme textes, tableaux et photos utilisés dans un document.
Numérotation
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Action d'assigner un numéro à chaque élément graphique pour l'organiser.
Titres
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Noms donnés aux éléments graphiques pour indiquer leur contenu.
Légendes
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Diagrammes
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Traceurs
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Radio-isotope
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Activité spécifique élevée
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Période suffisamment longue
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Détection facile du rayonnement
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Agglutination immunologique
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Ag
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Ac
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Réaction Ag-Ac
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Amas visibles
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CRP
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Taux normal de CRP
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Syndrome inflammatoire
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Traitement oestrogénique
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Inflammation et CRP
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Complexe immun
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TMB
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Produits de réaction
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Couleur bleue
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Visualisation du complexe
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Anticorps secondaire
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Incuber
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Plaque de culture
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Parafilm
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Température ambiante
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Study Notes
Travaux Pratiques & Dirigés d'Immunologie (B3103)
- Cours et travaux pratiques de 18 heures
- Semestre S5 (2024-2025)
- Université Libanaise, Faculté des Sciences II
- Département Sciences de la Vie et de la Terre
Programme
- Les anticorps polyclonaux et monoclonaux (TD)
- Réactions de précipitation et d'agglutination (CRP, latex)
- Immunohématologie (groupage ABO, rhésus, test de Coombs)
- Immunofluorescence (IF/IHC/FACS), isolation des cellules mononucléaires sanguines (Ficoll) (TD)
- Versions d'ELISA (TD)
- Immunodétection enzymatique (ELISA : indirecte, directe, Sandwich)
- Immunodiffusion, Western Blotting
- Test hémolytique du complément
- Test Rapide
Calcul des notes
- Pour cours théoriques : les travaux pratiques représentent 30% maximum de la note finale (examen partiel + examen final + travaux pratiques). Le conseil de la section définit les pourcentages des examens écrit et oral.
- Pour cours pratiques uniquement :
- 10% présence
- 20% rapport remis au professeur
- 40% examen pratique
- 30% examen écrit.
- Cas d'absence aux examens pratiques : la note de l'examen pratique est répartie équitablement entre le rapport remis au professeur et l'examen écrit.
- CAS PARTICULIERS :
- Si le cours pratique comprend plusieurs parties :
- Examen pratique par partie
- Un examen théorique de 2 heures sur l'ensemble des parties.
- La note est calculée en fonction des heures allouées par partie.
- Étudiant absent plus de 2 fois à une partie, n'a pas le droit de passer l'examen pratique de cette partie ni l'examen écrit.
- Étudiant ayant une note finale inférieure à 50/100 en cours pratiques n'est pas admis et doit passer uniquement l'examen écrit pour la session en question.
- Un étudiant qui échoue en cours pratiques de la deuxième session n'est pas autorisé à avoir son évaluation en travaux pratiques pour l'année suivante.
Instructions Générales pour les travaux pratiques d'Immunologie Fondamentale
- Port obligatoire d'une blouse de laboratoire en coton à manches longues et de gants.
- Considérer chaque échantillon biologique comme potentiellement infectieux. Éviter le contact avec la peau et les muqueuses.
- Le matériel à usage unique sera éliminé dans des sacs poubelles.
- Nettoyage du matériel de laboratoire avec de l'eau de Javel à 30%, et lavage abondant avec de l'eau du robinet et de l'eau distillée si nécessaire.
- Nettoyage de la paillasse avec de l'éthanol 70%
- Lavage des mains pendant 30 secondes avant de quitter le laboratoire.
Rédaction d'un rapport scientifique
- Le rapport doit être explicite, objectif, instructif, concis, et précis.
- Organisé en 4 sections : Introduction, Matériel et Méthodologie, Résultats, Conclusion.
- Introduction : Problématique, Objectif, Principe.
- Matériel et Méthodologie : Description des réactifs, Méthodes quantitatives utilisées (volume, dilutions, durée et température d'incubation, etc.).
- Résultats : Description des observations, mise en forme adéquate (tableau, graphique, diagrammes), légende précise des éléments.
- Conclusion : Interprétation des résultats, limites de l'interprétation, recommandations.
Les Anticorps Polyclonaux et Monoclonaux
- Antisérum polyclonal : Les antigènes ont de nombreux épitopes. Réponse immunitaire avec plusieurs clones de lymphocytes B.
- Avantages et désavantages de la réponse polyclonale sont décrits dans des schémas.
- Méthode de production des anticorps monoclonaux: (Köhler & Milstein, 1975)
- Description du protocole avec schéma explicatif.
Difficultés techniques dans la production d'anticorps monoclonaux humains
- Manque de cellules humaines immortelles, HGPRT, et Ig.
- Difficulté d'obtenir facilement des cellules B activées à partir de tissus lymphoïdes humains.
- Reconstitution de souris SCID (déficience immunitaire combinée) et souris humanisées (Hu-SCID).
Utilisation des Anticorps Monoclonaux
- En diagnostic (Imagerie avec marquage radioactif)
- En thérapie (Immunotoxines)
Les techniques immunologiques basées sur l'interaction Ag/Ac
- Techniques sans marquage : Précipitation, agglutination, complément, neutralisation
- Techniques avec marquage : Immunofluorescence, Radio-immunologie, Immuno-enzymologie
Techniques d'immunoanalyse
- La spécificité des réactions Ag-Ac permet la recherche, l'identification et le dosage de molécules.
- Recherche ou dosage par liaison Ag-Ac
- Précipitations
- Immunodiffusion
- Electro-immunodiffusion/ Western blot
- Différentes techniques utilisant complément (ex: fixation du complément)
A) Techniques Sans Marquage : Précipitation
- Généralités : réaction antigène-anticorps en milieu liquide.
- Etude de la courbe de précipitation : zones d'excès d'anticorps, d'équivalence, d'excès d'antigène.
- Mécanisme (théorie du réseau).
- Précipitation en milieu liquide : réactions qualitatives et quantitatives (ex: test en anneau, immunonéphélémétrie laser).
- Précipitation en milieu gélifié : immunodiffusion simple (technique de Mancini), double immunodiffusion (technique d'Ouchterlony).
B) Techniques Avec Marquage : Immunodiffusion (avec schéma explicatif des étapes)
- Electro-immunodiffusion/ Western blot
C) Sensibilité des tests
- Valeurs de sensibilité pour divers tests immunologiques
1. Etude du complément
- Réaction d'hémolyse
- Système hémolytique (GR de mouton, antisérum de lapin).
2. Réaction de fixation du complément
- Principe
- Applications
3. Techniques de marquage
- Corps fluorescents (ex: FITC, rhodamine, phycoérythrine)
- Enzymes (ex: péroxydase, phosphatase alcaline).
- Radioisotopes (ex: 125 I, 3H)
- Description technique de Immunofluorescence directe/indirecte, Sandwich (avec des schémas)
- Cytométrie de flux
4. Analyse immunométrique
- Principe (avec diagramme explicatif): Ag en excès, addition d'Ac marqué.
- Lecture du signal, courbe d'étalonnage
5. Analyse immunoenzymatique (ELISA)
- Principe avec schéma
- Méthode indirecte (avec schéma)
- Méthode par compétition
- Méthode sandwich (avec schéma)
6. Examen ELISA des anticorps IgG contre Toxoplasma gondii
- Introduction
- Principe
- Matériel et méthodologie en détail.
- Procédure en détail.
7. Immunohématologie et test de Coombs
- Principe : recherche d'antigènes et d'anticorps sur les globules rouges.
- Test direct : anticorps fixés sur les globules rouges (in-vivo).
- Test indirect : présence d'anticorps dans le plasma du patient qui réagit avec les globules rouges connus (in-vitro), et détermination du test de groupage sanguin.
- Protocole expérimental ABO / protocole expérimental Rhésus.
8. Immunodiffusion
- Principe et procédure.
9. Activité lytique du complément
- Introduction et principe
- Description des voies d'activation du complément (classique, alterne, lectine)
- Aspects historiques.
- Schéma ou diagramme des voies d'activation.
10. Protocole expérimental
- Remplir les tubes pour effectuer le test de lyse.
- Observer les résultats.
11. Test de Grossesse hCG
- Introduction (détection hCG dans les urines), principe et procédure.
- Interprétation des résultats (positif/négatif/non valide).
- Précautions d'emploi, Conservation et stabilité.
C) Sensibilité des tests
- Valeurs de sensibilité des différents tests immunologiques selon le type de test (ex: précipitation, agglutination, ELISA, immunofluorescence, cytométrie en flux).
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Description
Ce quiz explore l'importance des éléments graphiques dans les documents, ainsi que des questions spécifiques sur l'utilisation des radio-isotopes en biologie médicale. Il aborde des aspects pratiques liés à l'incubation et à la stabilité des molécules marquées. Testez vos connaissances sur ces sujets essentiels à la recherche scientifique.